Date published: 2026-7-25

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TRESK Plásmido CRISPR/Cas9 KO (m): sc-436076

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Fichas Técnicas
  • Especies Diana: mouse
  • 20 µg de plásmido de ADN purificado listo para la trasfección; suficiente para 20 transfecciones máximo
  • TRESK El plásmido CRISPR/Cas9 Knockout (KO) (m) es un conjunto de plásmidos, cada uno de los cuales codifica la nucleasa Cas9 y un ARN guía (gRNA) de 20 nt específico para el objetivo, diseñado para lograr la máxima eficiencia de knockout utilizando secuencias derivadas de la biblioteca GeCKO v2
  • Las secuencias de gRNA dirigen a Cas9 para que induzca roturas de doble cadena (DSB) específicas en el locus genómico TRESK, lo que da lugar a la inactivación del gen mediante unión de extremos no homólogos (NHEJ)
  • Se recomienda el plásmido HDR TRESK (m) (sc-436076-HDR) para la cotransfección con el plásmido CRISPR/Cas9 KO TRESK (m) a fin de permitir la selección de células editadas con éxito mediante la integración mediada por HDR de un casete de resistencia a la puromicina y un gen reportero RFP
  • El plásmido HDR TRESK (m) es un conjunto de plásmidos, cada uno de los cuales contiene una plantilla de reparación dirigida por homología (HDR) correspondiente a los sitios diana del ARN guía (gRNA) en el plásmido CRISPR/Cas9 KO TRESK (m)
  • Cada plásmido HDR contiene dos brazos de homología de ~800 pb que flanquean los casetes de resistencia a la puromicina y RFP, diseñados para unirse a secuencias de ADN genómico que rodean el sitio de rotura de doble cadena inducida por Cas9 y facilitar la integración precisa mediada por HDR
  • Los genes de resistencia a la puromicina y RFP están flanqueados por sitios LoxP, lo que permite la eliminación de los marcadores de selección mediante la recombinasa Cre (Vector Cre: sc-418923) tras el establecimiento de líneas celulares knockout estables
  • Tras la transfección, la eficacia del knockout puede comprobarse mediante WB, IF ó IHC utilzando el anticuerpo: TRESK Anticuerpo (E-2): sc-514525
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    Información sobre pedidos

    Nombre del productoNúmero de catálogoUNIDADPrecioCANTIDADFavoritos

    TRESK Plásmido CRISPR/Cas9 KO (m)

    sc-436076
    20 µg
    $397.00

    TRESK Plásmido HDR (m)

    sc-436076-HDR
    20 µg
    $445.00

    Descripción general

    Kcnk18 codifica el canal de potasio de dominio de dos poros TRESK (K2P18.1) del ratón, una conductancia de K+ de fondo/de fuga que ayuda a establecer el potencial de membrana en reposo y a amortiguar la excitabilidad en neuronas y otras células excitables. La actividad de TRESK está modulada por la señalización intracelular de Ca2+, incluida la desfosforilación dependiente de calcineurina, lo que lo vincula al control dependiente de estímulos de la repolarización de la membrana y de los umbrales de disparo. Al moldear la homeostasis iónica y la excitabilidad, Kcnk18 se relaciona con vías relevantes para la transducción sensorial y las respuestas neurofisiológicas al estrés. La disfunción de los canales K2P se estudia con frecuencia en el contexto de los circuitos relacionados con el dolor y la hiperexcitabilidad neuronal asociada a la cefalea, lo que convierte a Kcnk18 en un objetivo útil para modelos mecanísticos.

    El plásmido CRISPR/Cas9 KO TRESK (m) es un conjunto de plásmidos diseñado para la interrupción selectiva del gen Kcnk18 en líneas celulares mouse. Cada plásmido del conjunto coexpresa un ARN guía específico (sgRNA) único, dirigido a un sitio distinto dentro del locus Kcnk18, junto con la nucleasa Cas9 de Streptococcus pyogenes, y codifica GFP para permitir la identificación fluorescente y el enriquecimiento de las células transfectadas con éxito. Esta estrategia multiguía aumenta la probabilidad de inducir desplazamientos de marco de lectura o deleciones que produzcan una inactivación funcional, ofreciendo una alternativa más robusta a los enfoques de guía única. Las DSB inducidas en múltiples sitios se resuelven mediante unión de extremos no homólogos (NHEJ) o, cuando se utiliza con la plantilla donante HDR incluida, mediante reparación dirigida por homología (HDR) en un sitio diana definido dentro del locus.

    Cuando se utiliza junto con el donante HDR que expresa RFP, la fluorescencia de GFP y RFP puede utilizarse conjuntamente para distinguir las poblaciones de células transfectadas de las editadas, lo que agiliza los flujos de trabajo de clasificación y selección de clones basados en citometría de flujo.

    Donante de reparación dirigida por homología (HDR) — Casete de puromicina con reportero RFP

    Para aplicaciones que requieren clones knockout confirmados y seleccionables, el plásmido HDR TRESK (m) incluye un constructo donante HDR que contiene un casete de resistencia a la puromicina (PuroR) y un reportero de proteína fluorescente roja (RFP), flanqueado por brazos de homología específicos de un sitio diana definido Kcnk18.
    Cuando se cotransfecciona con el plásmido TRESK CRISPR/Cas9 KO (m):

    • El casete PuroR-RFP se integra en el sitio de corte de Cas9 mediante HDR, interrumpiendo el marco de lectura abierto Kcnk18.
      La fluorescencia de la RFP proporciona un indicador visual inmediato del éxito de la integración, lo que permite la identificación o clasificación basada en la fluorescencia de las células editadas antes o junto con la selección con puromicina.
      Las células editadas con éxito se confirman mediante la resistencia a la puromicina, lo que reduce sustancialmente la carga de cribado de clones.
      Esta estrategia de selección es ideal para generar líneas celulares KO clonales estables para estudios funcionales posteriores, cribado de fármacos o desarrollo de modelos.

    Sistema de eliminación del casete Cre-lox

    La construcción donante HDR cuenta con sitios loxP que flanquean el casete de selección PuroR-RFP para permitir la eliminación limpia del marcador tras la confirmación del clon. La expresión transitoria de la recombinasa Cre a través del vector Cre: sc-418923 incluido extirpa el casete, dejando un sitio loxP residual mínimo dentro del locus Kcnk18 y eliminando posibles efectos de confusión en los ensayos posteriores.
    Este enfoque en dos pasos:

    • Minimiza la alteración de la arquitectura local de la cromatina y de los elementos reguladores vecinos
      Restaura un contexto genómico casi nativo en el locus editado
      Permite reutilizar la estrategia de selección con puromicina en la misma línea celular para ediciones adicionales

    Características principales

    • gRNA dirigido a los exones Kcnk18 críticos para la función TRESK
      Coexpresión de SpCas9 y sgRNA a partir de un único plásmido para una administración simplificada
      Donante HDR con resistencia a la puromicina para la selección positiva de clones
      Casete PuroR flanqueado por loxP con vector de recombinasa Cre para la eliminación sin fisuras del marcador
      Se suministra listo para su uso mediante transfección

    Sólo para uso en investigación. No destinado a uso diagnóstico o terapéutico.