ENOPH1-Aktivatoren umfassen eine Reihe von chemischen Verbindungen, die die funktionelle Aktivität von ENOPH1 durch ihren Einfluss auf verschiedene zelluläre Prozesse verstärken können. Mikrotubuli zerstörende Wirkstoffe wie Vinblastin, Nocodazol und Colchicin sowie der Mikrotubuli stabilisierende Wirkstoff Taxol stören die Mikrotubuli-Dynamik. Diese Störung oder Stabilisierung der Mikrotubuli kann eine kompensatorische Reaktion von ENOPH1 auslösen, die zu einer Erhöhung seiner funktionellen Aktivität führt, um die Bildung des Kernporenkomplexes wiederherzustellen oder aufrechtzuerhalten.
Proteasominhibitoren wie Epoxomicin, Bortezomib und MG132 sowie der Proteaseinhibitor Actinonin hemmen die Mechanismen des Proteinabbaus, was zu einer Proteinakkumulation in der Zelle führt. Diese erhöhte Proteinlast kann eine verstärkte Bildung des Kernporenkomplexes erforderlich machen, wodurch die funktionelle Aktivität von ENOPH1 verstärkt wird. In ähnlicher Weise können Inhibitoren des Kernexports und des Proteinhandels aus dem endoplasmatischen Retikulum, wie Leptomycin B bzw. Brefeldin A, den Bedarf an Kernporenkomplexbildung erhöhen und damit die Funktion von ENOPH1 verstärken. Verbindungen, die die N-gebundene Glykosylierung und die Ca2+-ATPase des sarkoplasmatischen/endoplasmatischen Retikulums hemmen, wie Tunicamycin und Thapsigargin, stören die zellulären Prozesse und lösen Stressreaktionen aus. Die Hemmung der N-gebundenen Glykosylierung durch Tunicamycin führt zu einer Anhäufung von Glykoproteinen, wodurch der Bedarf an Kernporenkomplexen zur Erleichterung ihres Transports steigt und somit indirekt die ENOPH1-Funktion stimuliert wird. Thapsigargin stört die Kalziumhomöostase durch Hemmung der sarkoplasmatischen/endoplasmatischen Retikulum-Ca2+-ATPase. Diese Störung macht eine verstärkte Bildung des Kernporenkomplexes erforderlich, um das zelluläre Gleichgewicht aufrechtzuerhalten, wodurch die funktionelle Aktivität von ENOPH1 verstärkt wird.
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