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Rab GDI α Double Nickase Plasmid (h) | sc-404659-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Rab GDI α Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404659-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GDI1 kodiert den Rab-GDP-Dissoziationsinhibitor Alpha (Rab GDI α), einen zytosolischen Regulator, der an prenylierten Rab-GTPasen bindet und deren Ablösung von Membranen, Solubilisierung sowie den Transport zu Zielkompartimenten während des vesikulären Transports steuert. Durch die Modulation des Rab-Zyklus zwischen membran- und zytosolassoziierten Pools trägt Rab GDI α dazu bei, endozytotische und exozytotische Transportprozesse, Organellidentität und Membrandynamik über verschiedene Signalwege hinweg zu koordinieren, darunter der Transport vom Endosom zum Golgi und das Recycling synaptischer Vesikel. Eine korrekte GDI1-Funktion unterstützt die hohen Anforderungen an den neuronalen Transport, und eine veränderte Regulation des Rab-abhängigen Transports wurde mit neuroentwicklungsbedingten und kognitiven Phänotypen in Verbindung gebracht. In humanen Systemen wird GDI1 häufig als Knotenpunkt untersucht, der Rab-GTPase-Signalgebung mit Proteostase, dem Turnover von Membranrezeptoren und der kompartimentspezifischen Transporttreue verknüpft.
Rab GDI α Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GDI1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GDI1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GDI1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GDI1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.