Systèmes CRISPR

Santa Cruz Biotechnology now offers target-specific CRISPR/Cas9 Knockout (KO) Plasmids, CRISPR Double Nickase Plasmids, CRISPR/ dCas9 Activation Plasmids and CRISPR Lenti Activation Systems for over 18,910 human and 18,340 mouse protein encoding genes.

Historique CRISPR/Cas9

Le système CRISPR/Cas est un mécanisme de défense immunitaire adaptatif utilisé par les bactéries et les lignées Archea pour la dégradation du matériel génétique qui leur est étranger. Dans ces organismes, le matériel génétique étranger provenant d'un bactériophage est acquis et intégré dans le locus CRISPR (1,2). Ce nouveau matériau, aussi connu comme un élément d'espacement, crée un fragment spécifique de la séquence utilisée pour la résistance contre une future infection bactériophage. Ces fragments spécifiques d'une séquence sont convertis en ARNs courts CRISPR (crARNs) et fonctionnent comme guide pour diriger le clivage de l'ADN complémentaire invasif par l'activité nucléase de la protéine associée-CRISPR (Cas) également codée par le locus CRISPR (1,2). La protéine nucléase Cas9 du système de CRISPR de type II possède un domaine de liaison à l'ARN, un lobe de reconnaissance d'hélice alpha (REC), un lobe de nucléase qui comprend le RuvC et HNH pour le clivage de l'ADN, et un site d'interraction du motif adjacent de protospacer (PAM) (1,2). Le crARN forme un complexe avec la nucléase Cas9 en se liant au lobe de REC, et forme plusieurs ponts salins avec le backbone du crARN (1,2,3).

Une fois que le crARN se lie à la Cas9, la conformation de la nucléase Cas9 change et crée un canal permettant la liaison de l'ADN (1,2,3). Le complexe Cas9/crARN analyse l'ADN pour trouver un site PAM (5'-NGG) (4,5,6). La reconnaissance d'un site PAM conduit au déroulement de l'ADN, et permet au crARN de vérifier la complémentarité de l'ADN adjacent au site PAM. Lorsque Cas9 se lie à un site PAM adjacent à une séquence d'ADN complémentaire du crARN, le lobe REC crée un hétéroduplex ARN-ADN avec l'ADN cible (3,4,7). La reconnaissance du site PAM est impliquée dans l'activation des domaines HNH et RuvC nucléolytiques qui entraine une coupure du double brin (DSB) dans l'ADN cible, conduisant à la dégradation de l'ADN (1,2,5,8). Si le crARN n'est pas complémentaire, alors Cas9 libère et recherche un autre site PAM (7). Les ruptures ciblées des brins du génome dans l'ADN peuvent être réparées via la voie de réparation des extrémités de jonction non homologues (NHEJ), qui entraine des insertions ou des suppressions créant des erreurs, ou par la voie de réparation homologue dirigée (HDR), qui peut être utilisée pour recombiner les marqueurs sélectionnés à des sites spécifiques dans le génome (2,9,10). Ce mécanisme CRISPR/Cas9 peut être réutilisé pour l'ingénierie génomique de divers systèmes, y compris les cellules mammaliennes.

La modification du génome via l'introduction de DSBs peut être réalisée avec des méganucléases, des nucléases à doigts de zinc (ZF), ou des effecteurs transactivateurs (TALEs), qui reconnaissent des séquences d'ADN, cependant, chacune de ces techniques a ses limites. Lors de l'utilisation de méganucléases il est difficile de montrer clairement la reconnaissance spécifique de site entre la nucléase et l'ADN (2). Les autres options, ZFs et TALEs, se sont avérées difficiles à concevoir et à reconnaître plus de 3 nt de l'ADN (2). Les ARN guides simples (sgARNs) qui agissent comme les crARNs sont facilement conçus et peuvent être exprimés avec la nucléase Cas9 dans le même vecteur pour cibler des sites spécifiques de l'ADN pour la modification du génome. Le système CRISPR/Cas9 dispose également d'une plus grande sensibilité et est plus efficace lorsqu'il est utilisé pour le screening que les petits shARN (small hairpin ARNs).

L'avantage principal de l'utilisation du système CRISPR/cas9 pour induire le DSB dans l'ADN génomique est son haut niveau d'efficacité. Cependant, cette efficacité peut être obscurcie par un certain nombre d'effets hors-cible, réduisant ainsi la spécificité de ce CRISPR/cas9. La spécificité peut être améliorée en utilisant un système CRISPR double nickase, dans lequel une paire de plasmides, chacun codant pour un cas9 (D10A) mutant nickase (Cas9n), sont dirigés vers un site spécifique d'une région distinct de l'ADN génomique grâce à un ARN guide spécifique de la cible (12). Chaque complexe Cas9n/sgARN crée une seule entaille dans le brin d'ADN qui est complémentaire de l'ARN guide (12). Chaque paire d'ARN guide est décalée d'environ 20 pb et reconnaît les séquences cibles situées sur les brins opposés de l'ADN cible. La double entaille créée par la paire de complexes Cas9n/ARNsg imite un DSB (12). Ainsi, l'utilisation de paires d'ARN guide permet d'accroitre la spécificité de l'édition du gènecible, tout en maintenant un haut niveau d'efficacité (12).

En plus de la modification du génome, le système de CRISPR a été conçu pour permettre l'activation significative de l'expression du gène endogène (13). Plusieurs composants du système de CRISPR ont été modifiés pour générer le complexe médiateur d'activation synergique (SAM) qui aboutit à un système d'activation de la transcription hautement efficace et spécifique (13). L'un des composants du complexe SAM modifié est la nucléase Cas9. Dans le système SAM, les domaines catalytiques de Cas9 sont désactivés et le dCas9 résultant est fusionné à un domaine d'activation de transcription (VP64). Dirigé par un ARN guide (sgRNA) cible, le complexe dCas9-VP64-sgRNA cible la région de 200pb du Site Transcriptionel de Départ (TSS) des gènes cellulaires pour réguler positivement l'expression de ces gènes (13). Pour améliorer la transcription, le sgARN a été modifié en y ajoutant un aptamère hairpin (épingle à cheveux) à la tétraboucle et à la tige de la boucle 2 (13). Ce aptamère sur le sgARN se lie sélectivement aux protéines d'enveloppe du bactériophage MS2 dimérisés (13). Fusioner les protéines MS2 aux domaines de transactivation p65 et HSF1 permet à la protéine de fusion résultante MS2-P65-HSF1 d'améliorer le recrutement de facteurs de transcription, améliorant ainsi la puissance de l'activation de gènes médié par dCas9 (13).

Produits CRISPR/Cas9 offerts par Santa Cruz Biotechnology, Inc.

Plasmides CRISPR/Cas9

CRISPR/Cas9 Plasmid product details:

  • 20 µg, jusqu'à 20 transfections
  • Les Plasmides CRISPR/Cas9 Knockout (KO) correspondent à un mélange de trois plasmides chacun codant la nucléase Cas9 et un ARN guide (gARN) cible de 20 nt specifique, élaboré pour une extinction (knockout) optimale.
  • Les séquences D'ARN guide (gARN) sont issues de la bibliothèque GeCKO (v2) et dirigent la protéine Cas9 pour induire une coupure du double brin (DSB) d'ADN génomique au niveau d'un site spécifique (11)
  • Les Plasmides KO CRISPR/Cas9 disponibles pour les gènes humains et de souris sont indiqués par la désignation (h) ou (m) dans le nom du produit. Exemple: p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (h) pour humain ou p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (m) pour souris
  • ADN plasmidique purifié et fourni prêt à être transfecté

Support Products for CRISPR/Cas9 Plasmids:

  • anticorps de contrôle disponibles
  • Ultracruz Transfection Reagent, sc-395739
  • Plasmid Transfection Medium, sc-108062
  • Control CRISPR/Cas9 Plasmid, sc-418922
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Comment fonctionnent les Plasmides CRISPR/Cas9?

Download CRISPR / Cas9 Protocols

HDR Plasmid

HDR Plasmid description:

  • Les Plasmides HDR fournissent une matrice de réparation de l'ADN spécifique pour une coupure du double brin (DSB), et s'utilisent uniquement quand co-transfectés avec les plasmides KO CRISPR/Cas9.
  • Lorsque co-transfecté avec le Plasmide KO CRISPR/Cas9, le Plasmide HDR incorpore un gène de résistance à la Puromycine permettant la sélection des cellules au niveau du site de rupture de l'ADN induit par la Cas9.

HDR Plasmid product details:

  • 20 µg, jusqu'à 20 transfections
  • Les Plasmides HDR à cible spécifique sont recommandés pour la co-transfection avec le Plasmide KO CRISPR/Cas9 du même gène cible (de la même espèce)
  • HDR Plasmid correspond à un mélange de 2-3 plasmides, chacun contenant une matrice de réparation homologue dirigée de l'ADN (HDR) correspondant aux sites de coupure générés par corresponding CRISPR/Cas9 KO Plasmids
  • Chaque matrice HDR correspond à deux bras homologues de 800 pb élaborés pour se lier spécifiquement à l'ADN génomique entourant le site de coupure de l'ADN double brin induit par Cas9
  • Chaque Plasmide HDR intègre un gène résistant à la puromycine afin de sélectionner les cellules dont le gène cible a été inactivé (KO) de façon stable.
  • Chaque gène de résistance à la puromycine est encadré par deux sites LoxP qui permettront d'être traités ulterieurement par le Vecteur Cre
  • Chaque Plasmide HDR contient également la RFP pour confirmer visuellement la transfection
  • ADN plasmidique purifié et fourni prêt à être transfecté

Support Products for HDR Plasmids:

Comment fonctionnent les Plasmides HDR ?

Expression allélique

Les cellules diploides ont deux copies homologues de chaque chromosomes, portant deux copies de chaque gène. Ces formes alternatives d'un même gène, qui n'ont pas besoin d'être identiques, sont appelés allèles, et à chaque locus chromosomique spécifique, un individu possède deux allèles du même gène. Dans une population, un allèle se présente plus fréquemment et est donc désigné comme l'allèle de type sauvage dominant et est habituellement responsable du phénotype de type sauvage. Les mutations peuvent créer de nouveaux allèles, et chaque nouvel allèle peut conduire à un changement du phénotype.

Comme les cellules diploïdes contiennent deux allèles pour la plupart des gènes, des passages supplémentaires de transfection et de sélection peuvent être nécessaires afin d'atteindre chaque gène ciblé, et produire une population de cellules KO homozygote. L'utilisation du plasmide KO CRISPR/Cas9 seul mènera à réparation NHEJ, introduisant des indels dans le gène d'intérêt. Après une transfection du plasmide CRISPR/Cas9, le knock-out du gène d'intérêt pourra se produire dans les deux allèles (knock-out bi-alléliques) dans certaines cellules, tandis que dans d'autres cellules, la cassure ne sera effective que dans un seul allèle (mono-alléliques knock-out). La population de cellules transfectées par CRISPR/Cas9 de comprendra donc deux cellules knock-out bi-alléliques et mono-allélique.

Réaliser un Western Blot après transfection avec un plasmide Knockout CRISPR/Cas9 permet de déterminer si vous avez des KO bi-allélique ou mono-allélique dans votre population de cellules. En isolant des colonies de cellules uniques, il est possible de cultiver une population de cellules qui sont soit mono-ou bi-allélique. Une fois que ces populations sont mises en culture jusqu'à confluence, un Western Blot peut montrer quelles colonies ont un knockdown bi-allélique ou mono-allélique du gène d'intérêt. Une population de cellules KO bi-allélique montrerait un knockdown de 100% de la protéine d'intérêt sur un Western Blot alors qu'une population de cellules avec un KO mono-allélique montrera un knockdown de 50% de l'expression de la protéine.

La co-transfection effective d'un plasmide CRISPR/Cas9 spécifique avec le plasmide HDR correspondant entrainera la rupture et la réparation homologue dirigé (HDR) du gène d'intérêt. Après co-transfection, il est alors possible de réaliser la sélection de cellules ayant incorporé avec succès le gène de résistance à la puromycine. Ce permettra également de sélectionner une population cellulaire mixte de cellules mono-alléliques et bi-alléliques. Un Western Blot sera de nouveau utile pour montrer quelles colonies présentent un KO bi-allélique du gène d'intérêt.


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Vecteur Cre

Cre Vector description:

  • Le Vecteur Cre exprime la recombinase Cre, une enzyme du bactériophage p1 qui catalyse la recombinaison ADN spécifique entre deux sites LoxP
  • When the CRISPR/Cas9 Knockout Plasmid is co-transfected with the HDR Plasmid, cells containing the edited DNA can be isolated using the selection marker inserted during homology-directed repair
  • Après la sélection, les cellules peuvent être transfectées avec le Vecteur Cre pour exciser le matériel génétique inséré durant la phase de réparation de l'ADN homologue, tel que le gène de résistance à la puromycine

Cre Vector product details:

  • 20 µg, jusqu'à 20 transfections
  • Recommandé pour la réparation de l'ADN des cellules sélectionnées ayant été effectivement modifiées par le Plasmide KO CRISPR/Cas9 et le Plasmide HDR
  • Le Vecteur Cre contient un promoteur CMV pour diriger l'expression de la recombinase Cre
  • Fourni en tant qu'ADN plasmidique purifié et prêt à la transfection
  • Cre Vector, sc-418923

Support Products for Cre Vector:

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Comment fonctionne le Vecteur Cre?

Download Cre Vector Protocols

Plasmides Double Nickase

Double Nickase Plasmid product details:

  • 20 µg, jusqu'à 20 transfections
  • Double Nickase Plasmids correspond à une paire de plasmides chacun codant la nucléase Cas9 mutante D10A et un ARN guide (gARN) cible de 20 nt specifique, élaboré pour le knockout optimal de l'expression d'un gène avec une plus grande spécificité que le plasmide KO CRISPR/Cas9 correspondant.
  • Les séquences des paires d'ARNg sont décalées de 20 pb environ pour induire avec la Cas9 une double entaille spécifique de l'ADN génomique, qui imite un DSB
  • L'un des plasmides de la paire contient un gène de résistance à la puromycine; l'autre plasmide de la paire contient un marqueur GFP pour confirmer visuellement la transfection
  • Les Plasmides Double Nickase disponibles pour les gènes humains et de souris sont indiqués par la désignation (h) ou (m) dans le nom du produit. Exemple: p53 Double Nickase Plasmid (h) pour humain ou p53 Double Nickase Plasmid (m) pour souris
  • ADN plasmidique purifié et fourni prêt à être transfecté

Support Products for Double Nickase Plasmids:

  • anticorps de contrôle disponibles
  • Ultracruz Transfection Reagent, sc-395739
  • Plasmid Transfection Medium, sc-108062
  • Control Double Nickase Plasmid, sc-437281
  • Puromycin dihydrochloride, sc-108071
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Comment fonctionnent les Plasmides Double Nickase?

Download Double Nickase Protocols

Plasmides d'Activation

CRISPR/dCas9 Activation Plasmid product details:

  • 20 µg, jusqu'à 20 transfections
  • Les plasmides d'activation CRISPR/dCas9 correspondent à un système d'activation de la transcription par un médiateur d'activation synergique du système (SAM) spécifiquement conçu pour réguler positivement l'expression des gènes
  • Les plasmides d'activation CRISPR/dCas9 se composent de trois plasmides suivants au ratio 1:1:1: un plasmide codant pour la nucléase Cas9 désactivée (dCas9) (D10A et N863A) fusionnées avec le domaine de transactivation VP64; un plasmide codant pour la protéine de fusion MS2-p65-HSF1; et un plasmide codant pour un ARN guide cible spécifique de 20nt
  • Les séquences des ARNg sont issues de la bibliothèque des séquences de Médiateur d'Activation Synergique (SAM) CRISPR/Cas9 humains collectés et dirige le complexe SAM pour se fixer à une région du site spécifique d'environ 200-250 nt en amont du site de départ de la transcription du gène cible
  • Le système SAM fournit un recrutement accru des facteurs de transcription pour une activation hautement efficace du gène cible
  • Les Plasmides KO CRISPR/Cas9 disponibles pour les gènes humains et de souris sont indiqués par la désignation (h) ou (m) dans le nom du produit. Exemple: p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (h) pour humain ou p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (m) pour souris
  • ADN plasmidique purifié et fourni prêt à être transfecté

Support Products for CRISPR Activation Plasmids:

  • anticorps de contrôle disponibles
  • Ultracruz Transfection Reagent, sc-395739
  • Plasmid Transfection Medium, sc-108062
  • Control CRISPR/dCas9 Activation Plasmid, sc-437275
  • Blasticidin S HCl solution, sc-495389
  • Hygromycin B, sc-29067
  • Puromycin dihydrochloride, sc-108071
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Comment fonctionnent les Plasmides d'Activation?

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Particules Lentivirales d'Activation

CRISPR/dCas9 Lentiviral Activation Particles product details:

  • Les Particules Lentivirales d'Activation encodent un système d'activation de la transcription par un médiateur d'activation synergique du système (SAM) spécifiquement conçu pour réguler positivement l'expression des gènes par transduction lentivirale des cellules (13)
  • Le complexe SAM se fixe à une région du site spécifique d'environ 200-250 nt en amont du site de départ de la transcription du gène cible et fournit un recrutement accru des facteurs de transcription pour une activation hautement efficace du gène cible
  • Les particules lentivirales d'Activation sont fournies congelées dans 200 µl de Milieu DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) avec 25 mM d'HEPES pH 7,3, contenant les éléments critiques dans les trois plasmides d'activation CRISPR/dCas9, qui sont nécessaires pour la régulation positive du gène cible:
    1. Gène codant pour la nucléase Cas9 désactivée (dCas9) (D10A et N863A) fusionnée au domaine de transactivation VP64, et gène de résistance à la blasticidine
    2. MS2-p65-HSF1 fusion protein, and hygromycin resistance genes
    3. Gène codant pour l'ARN guide cible spécifique de 20 nt, et un gène de résistance à la Puromycine
  • Recommandé pour l'utilisation de cellules difficiles à transfecter
  • Les Plasmides KO CRISPR/Cas9 disponibles pour les gènes humains et de souris sont indiqués par la désignation (h) ou (m) dans le nom du produit. Exemple: p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (h) pour humain ou p53 CRISPR/Cas9 KO Plasmids (m) pour souris

Support Products for CRISPR Lentiviral Activation Particles:

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Comment fonctionnent les Particules Lentivirales d'Activation?

Download Lentiviral Protocols

Foire aux questions

  • Quels sont les avantages du système CRISPR/Cas9 par rapport aux ARNi?

    Le système CRISPR/Cas9 inactive l'expression d'une protéine d'intérêt en ciblant et modifiant l'ADN génétique plutôt que d'utiliser l'intéférence ARN, qui cible et dégrade l'ARNm. Une fois que l'ADN génomique est modifié, le changement est permanent.

  • Pourquoi les chercheurs préfèrent utiliser l'outil de modification génomique CRISPR/Cas9 plutôt que les nucléases à doigts de zinc (ZFNs) et TALENs?

    Le système CRISPR/Cas9 est moins cher, plus efficace et bien plus précis.

  • Comment est conçue la séquence d'ARNg?

    SCBT utilise un mélange de 3 séquences d'ARNg cibles issues de la GeCKO v2 library. Les séquences publiées ont été sélectionnées pour avoir une forte efficacité de modification et un faible effet hors-cible.

  • Fournissez-vous les séquenses d'ARNg?

    Oui, ces séquences sont disponibles pour nos clients. Veuillez contacter notre Service Technique.

  • Pourquoi les Plasmides KO CRISPR/Cas9 sont fourni en tant que mélange de trois séquences ARN cible?

    Nos Plasmides KO CRISPR/Cas9 se présentent sous forme d'un mélange de trois séquences d'ARN cible afin d'assurer une modification suffisante du gène cible.

  • Le Plasmide HDR est-il également fourni en mélange de trois plasmides?

    Oui, chaque Plasmide HDR est élaboré pour fonctionner avec son ARNg correspondant.

  • Le Plasmide KO CRISPR/Cas9 peut-il être utilisé seul pour le knockout fonctionnel d'un gène?

    Oui, mais cela entrainera une réparation par jonction d'extrémités non homologues (Non-Homologous End-Joining ou NHEJ), pour entrainer des InDels (insertions/délétions). Les InDels altèrent la phase ouverte de lecture (Open Reading Frame ou ORF) et peuvent changer de façon significative la séquence d'acides aminés qui suit la coupure DSB ou bien introduire un codon stop prématurément. Les InDels créés par NHEJ peuvent entrainer des mutations aléatoires, ainsi le type et l'ampleur de la modification du gène devront être évalués expérimentalement.

  • Comment puis-je savoir si mes cellules ont bien été transfectées par le Plasmide KO CRISPR/Cas9?

    Les cellules peuvent être analysées pour l'expression de la GFP afin de déterminer l'efficacité de la transfection. D'autres essais sont nécessaires pour déterminer le degré de modification du gène.

  • Comment puis-je savoir si mes cellules ont bien été transfectées par le Plasmide HDR?

    Les cellules peuvent être analysées pour l'expression de la RFP afin de déterminer l'efficacité de la transfection. D'autres essais sont nécessaires pour déterminer le degré de modification du gène.

  • Comment puis-je savoir si mes cellules ont bien été modifiées par les Plasmides KO CRISPR/Cas9 et HDR?

    Les cellules modifées avec succès vont alors contenir un gène de résistance à la puromycine dans leur ADN génomique, permettant ainsi une sélection par la puromycine.

  • Quelle est la taille du bras homologue gauche (LHA) et le bras homologue droit (RHA) du Plasmide HDR?

    Leur taille est de 800 paires de bases assurant un alignement optimal avec l'ADN génomique et la réparation dirigée homologue.

  • Proposez-vous un contrôle CRISPR?

    Un contrôle négatif est disponible à notre catalogue. Il s'agit d'un plasmide KO CRISPR/cas9 avec une séquence unique ARNg ne correspondant à aucune séquence ARNg connue, le plasmide Contrôle CRISPR/cas9: sc-418922. Cette séquence ARNg ne va pas se lier à l'ADN génomique cible et le complexe cas9/ARNg ne pourra donc pas se lier à l'ADN génomique ou créer un DSB.

  • Qu'est-ce qu'une séquence PAM?

    La séquence du motif adjacent protospacer (protospacer adjacent motif ou PAM) doit être présent à l'extrémité 3' de la séquence d'ADN cible, mais n'est pas présents dans la séquence ARNg. La séquence cible dans l'ADN génomique doit être complémentaire de la séquence d'ARNg, et doit être immédiatement suivie par la séquence PAM à l'extrémité 3' pour que la cas9 puisse se lier à l'ADN.

  • Le complexe Cas9/gRNA coupe l'ADN génomique à quel niveau?

    Cas9 va couper l'ADN génomique à environ 3-5 paires de bases en aval de l'extrémité 3' de la séquence cible.

  • Le système CRISPR/Cas9 fonctionne-t-il sur des cellules divisibles ou non-divisibles?

    Oui. Les cellules divisibles peuvent utiliser soit la NHEJ soit HDR, alors que les cellules qui ne sont pas divisibles ne peuvent utiliser que la voie NHEJ.

  • Y a-t-il des variations d'efficacité entre les différentes lignées cellulaires?

    Oui, les résultats peuvent varier entre les lignées cellulaires ainsi que les séquences cibles.

  • Comment déterminez-vous si l'expression du gène d'intérêt a été réduit avec succès par le système de CRISPR/cas9?

    Il est possible de vérifier le knockdown d'un gène. La Puromycine permettra la sélection de cellules qui ont été modifiées avec succès par le plasmide HDR. L'analyse par WB montrera un knockdown des protéines. La PCR génomique détectera l'intégration génomique. Des mutations peuvent être détectées en amplifiant la séquence génomique, en clonant le fragment PCR, puis en le séquençant.

  • Que recommandez-vous pour la vérification de la transfection par Western Blot et/ou Immunofluorescence?

    L'analyse par Western Blot et PAR immunofluorescence détermineront que la protéine cas9 est exprimée. On peut utiliser le marqueur RFP pour visualiser la fluorescence au microscope ou utiliser un anticorps anti-cas9, Cas9 Antibody (7A9-3A3), sc-517386.

  • Combien de gènes puis-je diminuer l'expression en une fois?

    La quantité maximale de gènes pouvant être ciblés en une fois n'a pas été déterminé. Les recherches suggèrent qu'il est possible de cibler plusieurs gènes à la fois, selon comment les cellules réagissent à la co-transfection. Nous recommandons et garantissons l'utilisation des PlasmidesCRISPR/Cas9 un à la fois.

  • Quels produits de support et réactifs de transfection dois-je acheter chez Santa Cruz Biotechnology pour utiliser ces plasmides KO CRISPR/Cas9?

    Control CRISPR/Cas9 Plasmid sc-418922, Ultracruz Transfection Reagent sc-395739, Plasmid Transfection Medium sc-108062, Puromycin dihydrocholoride sc-108071. We also offer control antibodies for each target-specific CRISPR/Cas9 KO Plasmid.

  • Pouvons-nous fournir des produits CRISPR à la demande?

    Veuillez contacter notre Service Technique pour plus d'information.

  • Quel est le délai de livraison pour les produits CRISPR qui ne sont pas en stock?

    10-14 days

References

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