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hamartin Double Nickase Plasmid (m) | sc-425739-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
hamartin Double Nickase Plasmid (m2) | sc-425739-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Tsc1** kodiert **Hamartin**, ein Gerüstprotein (Scaffold-Protein), das mit **TSC2** (Tuberin) einen funktionellen Komplex bildet und als zentraler negativer Regulator der **mTORC1**-Signalgebung wirkt. Über seine GAP-Aktivität gegenüber **Rheb** in Partnerschaft mit TSC2 integriert der TSC1/TSC2-Komplex Signale aus **PI3K–AKT**, **AMPK** sowie zellulären Energie- und Stressreizen, um anabole Wachstumsprogramme, Translation und Autophagie zu dämpfen. Der Verlust der Hamartin-Funktion stört die homöostatische Kontrolle von Zellgröße und Stoffwechsel und ist eng mit der Biologie des **Tuberöse-Sklerose-Komplexes** verknüpft, einschließlich aberranter proliferativer und neuroentwicklungsbezogener Phänotypen in experimentellen Modellen. Entsprechend wird **Tsc1** häufig in Studien zur Nährstoffsensorik, Proteostase, synaptischen Funktion und zu Tumorsuppressor-Signalwegen eingesetzt.
hamartin Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Tsc1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Tsc1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Tsc1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Tsc1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.