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Sar1a Double Nickase Plasmid (h) | sc-404190-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Sar1a Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404190-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SAR1A kodiert Sar1a, eine kleine COPII-GTPase, die an ER-Austrittsstellen den Aufbau des COPII-Mantels initiiert und damit den Transport vom endoplasmatischen Retikulum (ER) zum Golgi antreibt. Durch den Wechsel zwischen GDP- und GTP-gebundenen Zuständen rekrutiert Sar1a Sec23/24 und fördert die Abschnürung von Vesikeln; so verknüpft es den sekretorischen Transport mit Membranhomöostase und Proteostase. SAR1A-abhängige COPII-Dynamiken beeinflussen die Sekretion von Komponenten der extrazellulären Matrix und von Lipoproteinen, und Störungen in der frühen sekretorischen Route sind für zelluläre Stressantworten sowie Erkrankungen mit gestörtem Proteintransport relevant. In humanen Zellmodellen wird Sar1a häufig untersucht, um seine Rollen in der Regulation des sekretorischen Weges, der Organisation von Organellen und den nachgelagerten Auswirkungen auf Signalgebung und Stoffwechsel zu verstehen.
Sar1a Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SAR1A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SAR1A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SAR1A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SAR1A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.