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LPL Double Nickase Plasmid (h) | sc-400751-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LPL Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400751-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
LPL kodiert die Lipoproteinlipase, ein sezerniertes und am Endothel verankertes Enzym, das Triglyceride in zirkulierenden Chylomikronen und VLDL hydrolysiert und dadurch freie Fettsäuren zur Aufnahme durch Muskel- und Fettgewebe freisetzt. Diese Aktivität koordiniert Programme der Lipidaufnahme, -speicherung und -oxidation und greift in Prozesse des Lipidtransports und des Lipoprotein-Remodelings ein, an denen Apolipoproteine und Heparansulfat-Proteoglykane beteiligt sind. Aufgrund seiner zentralen Rolle bei der Clearance triglyzeridreicher Lipoproteine wird LPL intensiv im Kontext der metabolischen Homöostase und dyslipidämieassoziierter Phänotypen untersucht. Eine veränderte LPL-Funktion oder -Regulation ist mit Hypertriglyzeridämie und nachgelagerten kardiometabolischen Risikomechanismen verbunden, weshalb LPL ein häufiges Ziel mechanistischer Studien des Lipidstoffwechsels ist.
LPL Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LPL-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LPL abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LPL-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LPL-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.