



Información sobre pedidos
| Nombre del producto | Número de catálogo | UNIDAD | Precio | CANTIDAD | Favoritos | |
Plásmido Doble Nickase (h) BPAG1 | sc-403388-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Plásmido Doble Nickase (h2) BPAG1 | sc-403388-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Dystonin (DST), también conocido como BPAG1, codifica una gran proteína enlazadora del citoesqueleto de la familia de las plaquinas que acopla los filamentos intermedios con la actina, los microtúbulos y complejos de unión asociados a la membrana. En contextos epiteliales y neuronales, BPAG1 contribuye a la integridad de los hemidesmosomas, a la adhesión célula–matriz y a la organización del citoesqueleto, influyendo así en la polaridad celular, la migración y la resistencia al estrés mecánico. Las isoformas de DST participan en procesos coordinados de entrecruzamiento del citoesqueleto y de tráfico intracelular que afectan la arquitectura tisular y la estabilidad axonal. La alteración genética o los cambios en la expresión de DST se han asociado con fenotipos cutáneos ampollosos y características neurodegenerativas, lo que lo convierte en un objetivo relevante para estudiar mecanismos de fallo del citoesqueleto y la biología de las uniones celulares.
BPAG1 El plásmido de doble nicasa (h) consiste en un par de plásmidos emparejados diseñados para la edición de alta especificidad del locus DST en líneas celulares human. Cada plásmido expresa una nicasa Cas9 D10A y un ARN guía específico (sgRNA) dirigido a cadenas de ADN opuestas dentro de DST. Cuando se dirigen a sitios adyacentes en cadenas de ADN opuestas, las dos nicasas generan cortes en cadena simple desplazados que, juntos, producen una rotura de doble cadena escalonada, lo que requiere una actividad coordinada sobre el objetivo por parte de ambas guías. La rotura de ADN resultante se resuelve mediante vías de reparación celular endógenas, más comúnmente a través de la unión de extremos no homólogos (NHEJ), lo que da lugar a inserciones o deleciones que alteran la función de DST. Al requerir la participación de dos ARN guía en el locus diana, el enfoque de doble corte mejora la especificidad de la edición y proporciona una estrategia CRISPR complementaria para aplicaciones en las que se desea un control adicional sobre la precisión de la orientación.
Para facilitar la identificación eficiente de las células editadas, un plásmido codifica GFP para la visualización fluorescente de las poblaciones transfectadas, mientras que el plásmido complementario lleva un gen de resistencia a la puromicina para la selección con antibióticos. En conjunto, estas características facilitan el enriquecimiento eficiente de las poblaciones cotransfectadas y simplifican la validación de los clones con DST alterado.
Sólo para uso en investigación. No destinado a uso diagnóstico o terapéutico.