Las17 Inhibitoren

Gängige Las17 Inhibitors sind unter underem Latrunculin A, Latrunculia magnifica CAS 76343-93-6, Cytochalasin D CAS 22144-77-0, NXY 059 CAS 168021-79-2, CK 666 CAS 442633-00-3 und CK-869 CAS 388592-44-7.

Las17-Inhibitoren sind eine Klasse chemischer Verbindungen, die speziell auf Las17 abzielen und dessen Aktivität hemmen. Las17 ist ein Protein, das in Hefe vorkommt und homolog zur menschlichen WASP-Familie (Wiskott-Aldrich-Syndrom-Protein) ist. Las17 spielt eine entscheidende Rolle bei der Regulierung des Aktin-Zytoskeletts, indem es die Aktin-Polymerisation fördert, die für verschiedene zelluläre Prozesse, einschließlich Endozytose, Aufrechterhaltung der Zellform und intrazellulären Transport, unerlässlich ist. Die Hemmung von Las17 stört diese Prozesse und gibt Aufschluss über die Mechanismen, die die Aktindynamik steuern. Diese Inhibitoren sind wertvoll für die Untersuchung der molekularen Signalwege, die an der Bildung und Umgestaltung von Aktinfilamenten beteiligt sind, insbesondere im Zusammenhang mit der Hefezellbiologie. Sie helfen dabei, die Funktion von Las17 bei der Koordination der Aktin-Assemblierung und seiner Interaktion mit anderen Aktin-regulierenden Proteinen aufzuklären. Strukturell sind Las17-Inhibitoren oft so konzipiert, dass sie an die GTPase-Bindungsdomäne (GBD) von Las17 binden und so dessen Interaktion mit anderen Schlüsselmolekülen, die an der Aktinpolymerisation beteiligt sind, verhindern. Durch die Blockierung dieser Interaktion können die Inhibitoren die Rekrutierung von Proteinen, die für die Aktinfilament-Keimbildung notwendig sind, behindern und so den Polymerisationsprozess stoppen. Dadurch sind sie nützliche Werkzeuge bei der Analyse der fein abgestimmten Regulationsmechanismen der Zytoskelettdynamik. Darüber hinaus bieten sie eine Möglichkeit zu erforschen, wie sich Störungen in der Aktinregulation auf allgemeine zelluläre Funktionen wie den Vesikeltransport und die Zellmorphogenese auswirken. In Hefemodellen werden Las17-Inhibitoren oft in Kombination mit anderen molekularen Werkzeugen eingesetzt, um aktinabhängige Signalwege zu kartieren und die räumlich-zeitliche Steuerung der Aktinbildung in zellulären Prozessen zu untersuchen.