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IL-13Rα1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-405042-ACT | 20 µg | $397.00 |
IL13RA1 kodiert den humanen Interleukin-13-Rezeptor alpha 1 (IL-13Rα1), eine ligandenbindende Untereinheit, die zusammen mit IL-4Rα einen funktionellen Signalübertragungskomplex bildet, um Signale von IL-13 und IL-4 weiterzuleiten. Die Aktivierung dieses Rezeptorkomplexes schaltet Kinasen der JAK-Familie sowie die nachgeschaltete STAT6-Signalgebung an und koordiniert Transkriptionsprogramme, die mit Typ-2-Inflammation, epithelialem Remodeling und der Polarisierung von Makrophagen verknüpft sind. Die Aktivität von IL-13Rα1 beeinflusst das Zytokin-Crosstalk in Immun- und Barrieregeweben und prägt Reaktionen wie Schleimproduktion, Regulation der extrazellulären Matrix und Chemokinexpression. Eine dysregulierte, IL13RA1-assoziierte Signalgebung wurde u. a. im Kontext allergischer Atemwegsentzündung, fibrotischem Remodeling und der Immunbiologie des Tumormikromilieus untersucht und ist damit ein relevantes Ziel für die mechanistische Analyse von Signalwegen.
IL-13Rα1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen IL13RA1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
IL-13Rα1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des IL13RA1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der IL13RA1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen IL-13Rα1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native IL13RA1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von IL-13Rα1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des IL-13Rα1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem IL13RA1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.