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EphB2 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401642-ACT | 20 µg | $397.00 |
EPHB2 kodiert die humane Rezeptor-Tyrosinkinase EphB2, ein Mitglied des Eph/Ephrin-Signalsystems, das kontaktabhängige Kommunikation vermittelt und dadurch Zellpositionierung, Grenzbildung und Axonführung steuert. Die Aktivierung von EphB2 durch Ephrin‑B‑Liganden reguliert über Signalwege mit Rho‑GTPasen, MAPK‑Signalen und PI3K‑assoziierten Netzwerken den Umbau des Zytoskeletts, die Dynamik der Zelladhäsion und die Zellmigration. In Säugetiergeweben trägt EphB2 zur Entwicklungsstrukturierung und zur Aufrechterhaltung der epithelialen Architektur bei; eine fehlregulierte EphB2‑Signalgebung wurde in der Krebsbiologie mit veränderter Invasivität und Differenzierungszuständen in Verbindung gebracht. EPHB2 wird außerdem im Kontext neuroentwicklungsbezogener Prozesse und der synaptischen Organisation untersucht, bei denen graduierte Rezeptor‑Ligand‑Interaktionen die Schaltkreisbildung beeinflussen.
EphB2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen EPHB2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
EphB2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des EPHB2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der EPHB2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen EphB2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native EPHB2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von EphB2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des EphB2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem EPHB2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.