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EMMPRIN/CD147 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400589-ACT | 20 µg | $397.00 |
Basigin (BSG), allgemein bekannt als EMMPRIN/CD147, ist ein weit verbreitet exprimiertes Glykoprotein der Immunglobulin-Superfamilie, das Zell‑Zell‑Interaktionen und den Umbau der extrazellulären Matrix moduliert. CD147 fördert die Induktion von Matrixmetalloproteinasen und kooperiert mit Monocarboxylat-Transportern, um den Laktattransport und die metabolische Anpassung zu unterstützen, wodurch es mit Hypoxieantworten, Entzündung und Programmen der Zellmigration verknüpft ist. Darüber hinaus fungiert es als Signalplattform über Interaktionen mit Cyclophilinen und integrinassoziierten Signalwegen und beeinflusst so Adhäsion und zytoskelettale Dynamik. Eine dysregulierte BSG/CD147-Expression wird mit Tumorinvasion und Metastasierung, vaskulärem Remodeling und entzündungsbedingten Gewebeschäden in Verbindung gebracht, was es zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien des Crosstalks im Mikromilieu macht.
EMMPRIN/CD147 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen BSG-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
EMMPRIN/CD147 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des BSG-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der BSG-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen EMMPRIN/CD147-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native BSG-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von EMMPRIN/CD147-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des EMMPRIN/CD147-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem BSG-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.