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ALK-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400728-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ALK-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400728-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACVRL1 kodiert die Activin-Rezeptor-ähnliche Kinase 1 (ALK-1), einen Serin/Threonin-Kinase-Rezeptor vom Typ I in der TGF-β/BMP-Superfamilie, der im vaskulären Endothel besonders aktiv ist. Nach Ligandenbindung bildet ALK-1 Komplexe mit Typ-II-Rezeptoren, um SMAD1/5/8 zu phosphorylieren, und greift damit in SMAD4-abhängige Transkriptionsprogramme ein, die angiogenes Remodeling, endotheliale Proliferation und Gefäßreifung steuern. Die ALK-1-Signalübertragung überschneidet sich funktionell mit VEGF-Signalwegen und wirkt den ALK-5/SMAD2/3-Outputs entgegen, um das Gleichgewicht zwischen endothelialer Ruhe und Aktivierung fein abzustimmen. Eine fehlregulierte ACVRL1-Aktivität ist mit Phänotypen vaskulärer Fehlbildungen assoziiert, darunter die hereditäre hämorrhagische Teleangiektasie, was ACVRL1 zu einem zentralen Knotenpunkt für mechanistische Studien der Endothel-Signalgebung und Gefäßintegrität macht.
ALK-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACVRL1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACVRL1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACVRL1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACVRL1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.