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TRIP12 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403860-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TRIP12 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403860-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TRIP12 kodiert eine E3-Ubiquitin-Protein-Ligase (auch ULF genannt), die die Ubiquitinierung von Substraten und deren proteasomalen Abbau fördert und dadurch die Proteinhomöostase sowie die Stärke zellulärer Signalwege mitprägt. TRIP12 ist an DNA-Schadensantworten und der Kontrolle des Zellzyklus beteiligt, indem es zentrale Checkpoint- und Tumorsuppressor-Signalwege reguliert, einschließlich der Modulation der Aktivität der p14ARF–MDM2–p53-Achse. Durch seinen Einfluss auf die ubiquitinabhängige Qualitätskontrolle trägt TRIP12 zur Genomstabilität und zur Anpassung an zellulären Stress bei. Veränderte TRIP12-Funktion oder -Expression wird mit dysregulierter Proliferation und neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen in Verbindung gebracht, was TRIP12 zu einem relevanten Ziel für mechanistische Studien in der Krebsbiologie und in neuronalen Modellen macht.
TRIP12 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TRIP12-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TRIP12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TRIP12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TRIP12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.