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TREX-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403875-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TREX-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403875-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
TREX1 kodiert TREX-1, die wichtigste 3′→5′-DNA-Exonuklease in Säugerzellen, die zytosolische einzel- und doppelsträngige DNA abbaut, die aus endogenen Retroelementen, Replikationsstress oder Zwischenprodukten der DNA-Reparatur stammt. Indem TREX-1 die abnorme Anreicherung von Nukleinsäuren begrenzt, trägt es dazu bei, die Aktivierung der cGAS–STING-Signalübertragung und nachgeschalteter Typ‑I‑Interferon-Programme zu dämpfen, und verbindet so die Überwachung der Genomintegrität mit der Homöostase des angeborenen Immunsystems. Ein Verlust oder eine Funktionsstörung von TREX-1 ist mit chronischer Interferon-Signalgebung und Phänotypen der Immundysregulation assoziiert und wird häufig im Kontext der entzündungsgenetischen Forschung sowie nukleinsäuregetriebener Sensoriksignalwege untersucht. TREX-1 steht außerdem mit DNA-Replikations- und Reparaturprozessen in Verbindung, indem es DNA-Substrate verarbeitet, die andernfalls Schadensantworten auslösen könnten.
TREX-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des TREX1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von TREX1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die TREX1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit TREX1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.