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TM9SF4 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-406168-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
Das humane TM9SF4 (Transmembran-9-Superfamilienmitglied 4) kodiert ein multipassiges Membranprotein, das in endosomalen/lysosomalen Kompartimenten angereichert ist und dort zum vesikulären Transport, zur Ansäuerung von Organellen sowie zum Turnover von Membranproteinen beiträgt. TM9SF4 wird mit der Regulation der Endozytose und von Autophagie-Lysosom-Signalwegen in Verbindung gebracht und beeinflusst über die Kontrolle des intrazellulären pH-Werts und der Frachtsortierung die zelluläre Homöostase und Stressantworten. Eine veränderte TM9SF4-Expression oder -Funktion wurde mit Überlebensphänotypen von Tumorzellen und mit Kontexten immunbezogener Signalgebung assoziiert, was es für die Untersuchung der Krebszellbiologie und der Anpassung an das Mikromilieu relevant macht. Das Gene Editing von TM9SF4 ermöglicht eine mechanistische Analyse endolysosomaler Dynamiken, pH-abhängiger Proteostase und nachgeschalteter Effekte auf Rezeptorrecycling, Nährstoffsensorik und Zellzustandsübergänge in humanen Zellmodellen.
TM9SF4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h2) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen TM9SF4-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
TM9SF4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h2) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des TM9SF4-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der TM9SF4-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen TM9SF4-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native TM9SF4-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von TM9SF4-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des TM9SF4-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem TM9SF4-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.