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SR-A Double Nickase Plasmid (m) | sc-422832-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das murine Msr1 kodiert den Scavenger-Rezeptor der Klasse A (SR-A), einen trimeren Mustererkennungsrezeptor, der in Makrophagen und anderen myeloischen Zelllinien stark angereichert ist und an modifizierte Lipoproteine, apoptotische Zelltrümmer sowie mikrobielle Liganden bindet. SR-A ist an der angeborenen Immunerkennung, der Phagozytose und dem Lipidstoffwechsel beteiligt und beeinflusst dadurch nachgeschaltete inflammatorische Signalwege sowie die Polarisation von Makrophagen. Über diese Prozesse ist er mit Signalwegen verknüpft, die für die Biologie atherosklerotischer Läsionen, die Bildung von Schaumzellen und chronische Entzündungszustände relevant sind. Eine veränderte MSR1/SR-A-Aktivität wird außerdem in Kontexten wie Neuroinflammation und Gewebeumbau untersucht, in denen die Beseitigung schadenassoziierter Moleküle lokale Immunantworten prägt.
SR-A Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Msr1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Msr1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Msr1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Msr1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.