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Nicotinic Acetylcholine Receptor alpha 4/CHRNA4 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401605-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Nicotinic Acetylcholine Receptor alpha 4/CHRNA4 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401605-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CHRNA4 kodiert die α4‑Untereinheit neuronaler nikotinischer Acetylcholinrezeptoren (nAChR), die sich als pentamere, ligandengesteuerte Kationenkanäle zusammensetzen, häufig zusammen mit β2‑Untereinheiten zu hochaffinen α4β2‑Rezeptoren. Nach Bindung von Acetylcholin oder Nikotin vermitteln diese Rezeptoren einen Na⁺‑ und Ca²⁺‑Einstrom und regulieren so die Membranerregbarkeit, die synaptische Transmission und die aktivitätsabhängige Plastizität in cholinergen Schaltkreisen. CHRNA4‑abhängige Signalgebung greift in calciumabhängige Signalwege und Programme der Neurotransmitterfreisetzung ein, die die Funktion neuronaler Netzwerke im Hinblick auf Aufmerksamkeit, Wachheit und Belohnungsverarbeitung prägen. Genetische und funktionelle Störungen in CHRNA4 wurden mit neuropsychiatrischen und neurologischen Phänotypen in Verbindung gebracht, wodurch es ein relevantes Ziel für mechanistische Studien zur cholinergen Signalübertragung und Rezeptorbiologie darstellt.
Nicotinic Acetylcholine Receptor alpha 4/CHRNA4 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CHRNA4-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CHRNA4 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CHRNA4-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CHRNA4-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.