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GATA-2 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-420494-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das murine Gata2 kodiert den Zinkfinger-Transkriptionsfaktor GATA-2, einen zentralen Regulator für die Aufrechterhaltung hämatopoetischer Stamm- und Vorläuferzellen sowie für die endotheliale Entwicklung. GATA-2 bindet an GATA-Motive in Enhancern und Promotoren, um linienspezifische Transkriptionsprogramme zu koordinieren, und integriert dabei Zytokin-Signalwege und chromatinregulatorische Netzwerke, die Zellschicksalsentscheidungen prägen. In der Hämatopoese wirkt es in miteinander verknüpften erythro-myeloiden und Stammzell-Regulationskreisen zusammen mit Faktoren wie TAL1, RUNX1 und PU.1, um Proliferation, Überleben und Differenzierung zu steuern. Eine dysregulierte GATA-2-Dosierung stört die Blut- und Gefäßhomöostase und wird in experimentellen Modellen häufig als mechanistischer Ansatzpunkt genutzt, um myeloide Prädisposition, immundefizienzähnliche Phänotypen und leukämogene Transkriptionsprogramme zu untersuchen.
GATA-2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Gata2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
GATA-2 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Gata2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Gata2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen GATA-2-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Gata2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von GATA-2-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des GATA-2-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Gata2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.