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CTHRC1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-418193-ACT | 20 µg | $397.00 |
Humanes CTHRC1 (collagen triple helix repeat containing 1) kodiert ein sezerniertes, mit der extrazellulären Matrix assoziiertes Protein, das den Gewebeumbau sowie Zellmigration und Adhäsionsdynamiken moduliert. CTHRC1 wird mit der Regulation der TGF-β-Signalübertragung und nichtkanonischer Wnt-/planarer-Zellpolaritäts-(PCP)-Signalwege in Verbindung gebracht und beeinflusst dadurch die Zytoskelettorganisation und die gerichtete Zellbewegung. Eine veränderte CTHRC1-Expression wird häufig im Kontext fibrotischer Umbauprozesse, der Wundheilung und tumorassoziierter Stromaprogramme untersucht, bei denen Matrixumsatz und invasives Verhalten fehlreguliert sind. Als Faktor des Mikromilieus dient CTHRC1 als Marker und mechanistischer Knotenpunkt, um matrixgetriebene Signalwege, epithelial-mesenchymal-transition(EMT)-ähnliche Prozesse und die Bildung metastatischer Nischen zu untersuchen.
CTHRC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CTHRC1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CTHRC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CTHRC1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CTHRC1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CTHRC1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CTHRC1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CTHRC1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CTHRC1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CTHRC1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.