Date published: 2026-8-26

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BTN3A2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h): sc-416698

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • BTN3A2 Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im BTN3A2-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • BTN3A2 HDR-Plasmid (h) (sc-416698-HDR) wird für die Co-Transfektion mit dem BTN3A2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) empfohlen, um die Selektion erfolgreich editierter Zellen durch HDR-vermittelte Integration einer Puromycin-Resistenzkassette und eines RFP-Reportergens zu ermöglichen
  • Das BTN3A2 HDR-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes eine HDR-Matrize (Homology-Directed Repair) enthält, die den gRNA-Zielstellen im BTN3A2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) entspricht
  • Jedes HDR-Plasmid enthält zwei ~800 bp lange Homologiearme, die die Puromycin-Resistenz- und RFP-Kassetten flankieren und so konzipiert sind, dass sie an genomische DNA-Sequenzen binden, die die durch Cas9 induzierte Doppelstrangbruchstelle umgeben, und eine präzise HDR-vermittelte Integration ermöglichen
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
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    Bestellinformation

    ProduktKatalog #EINHEITPreisANZAHLFavoriten

    BTN3A2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h)

    sc-416698
    20 µg
    $397.00

    BTN3A2 HDR Plasmid (h)

    sc-416698-HDR
    20 µg
    $445.00

    Übersicht

    BTN3A2 (Butyrophilin-Unterfamilie 3, Mitglied A2) ist ein Typ‑I-Transmembranprotein der Immunglobulin-Superfamilie, das überwiegend auf antigenpräsentierenden Zellen und weiteren Immunzelllinien exprimiert wird. Als Teil der BTN3A-Familie innerhalb des B7‑ähnlichen immunregulatorischen Netzwerks trägt BTN3A2 zur Modulation von T‑Zell-Antworten bei und ist mit Signalwegen verknüpft, die die Immunüberwachung und inflammatorische Signalgebung steuern. Über seine extrazellulären Ig‑ähnlichen Domänen und intrazellulären Interaktionen wird BTN3A2 im Kontext der γδ‑T‑Zell-Biologie und von Antigenerkennungsmechanismen untersucht, die die Aktivierung angeboren‑ähnlicher Lymphozyten prägen. Eine veränderte BTN3A2-Expression wurde bei immunvermittelten Erkrankungen und in mehreren Krebszusammenhängen beschrieben, was seine Nutzung als Forschungsmarker für Immunregulation und Tumor‑Immun‑Interaktionen unterstützt.

    BTN3A2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des BTN3A2-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des BTN3A2-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.

    Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.

    Homology-Directed Repair (HDR)-Donor — Puromycin-Kassette mit RFP-Reporter

    Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das BTN3A2 HDR-Plasmid (h) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte BTN3A2 Zielstelle spezifisch sind.
    Bei Co-Transfektion mit dem BTN3A2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h):

    • Die PuroR-RFP-Kassette integriert sich über HDR an der Cas9-Schnittstelle und unterbricht dabei das BTN3A2 offene Lesegerüst.
      Die RFP-Fluoreszenz liefert einen unmittelbaren visuellen Hinweis auf eine erfolgreiche Integration und ermöglicht die fluoreszenzbasierte Identifizierung oder Sortierung editierter Zellen vor oder parallel zur Puromycin-Selektion.
      Erfolgreich editierte Zellen werden durch Puromycin-Resistenz bestätigt, was den Aufwand für das Klon-Screening erheblich reduziert.
      Diese Selektionsstrategie eignet sich ideal zur Erzeugung stabiler, klonaler KO-Zelllinien für nachgelagerte Funktionsstudien, Wirkstoffscreenings oder die Modellentwicklung.

    Cre-lox-Kassetten-Entfernungssystem

    Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des BTN3A2-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
    Dieser zweistufige Ansatz:

    • Minimiert Störungen der lokalen Chromatinarchitektur und benachbarter regulatorischer Elemente
      Stellt einen nahezu nativen genomischen Kontext am editierten Locus wieder her
      Ermöglicht die Wiederverwendung der Puromycin-Selektionsstrategie in derselben Zelllinie für weitere Editierungen

    Hauptmerkmale

    • gRNA, die auf BTN3A2 Exon(e) abzielt, die für die BTN3A2 Funktion entscheidend sind
      Koexpression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid für eine vereinfachte Verabreichung
      HDR-Donor mit Puromycin-Resistenz für die positive Klonselektion
      loxP-flankierte PuroR-Kassette mit Cre-Rekombinase-Vektor für die nahtlose Markerentfernung
      Wird gebrauchsfertig für die Verabreichung durch Transfektion geliefert

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.