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ATF-6α Double Nickase Plasmid (h) | sc-400259-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ATF-6α Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400259-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Der aktivierende Transkriptionsfaktor 6 alpha (ATF6α) ist ein in der Membran des endoplasmatischen Retikulums (ER) verankerter Transkriptionsfaktor, der als zentraler Sensor und Effektor der Antwort auf fehlgefaltete Proteine (unfolded protein response, UPR) fungiert. Bei ER-Stress wird ATF6α zum Golgi-Apparat transportiert, wo eine regulierte intramembranäre Proteolyse ein N‑terminales Fragment freisetzt, das in den Zellkern transloziert und dort Chaperone sowie Gene der ER-assoziierten Degradation (ERAD) induziert; so werden Proteostase und die Homöostase des sekretorischen Weges koordiniert. Die ATF6α-Signalgebung greift mit den PERK- und IRE1-Signalwegen ineinander und beeinflusst während der Stressadaptation die Translationskontrolle, das Redoxgleichgewicht und entzündliche Effekte. Eine fehlregulierte Aktivität der ATF6-Achse wurde mit Erkrankungen in Verbindung gebracht, die durch chronischen proteotoxischen Stress gekennzeichnet sind, darunter Stoffwechselstörungen, Neurodegeneration sowie die krebsassoziierte Anpassung an Hypoxie und Nährstoffmangel.
ATF-6α Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ATF6-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ATF6 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ATF6-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ATF6-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.