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Aldehyde dehydrogenase 1B1/ALDH1B1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-404562-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Aldehyde dehydrogenase 1B1/ALDH1B1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-404562-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das humane Gen **ALDH1B1** kodiert eine mitochondriale Aldehyddehydrogenase, die mithilfe von NAD(P)+ ein breites Spektrum endogener und xenobiotischer Aldehyde zu den entsprechenden Carbonsäuren oxidiert und damit das zelluläre Redoxgleichgewicht sowie die Aldehyd-Entgiftung unterstützt. Indem ALDH1B1 die Anreicherung reaktiver Aldehyde begrenzt, die bei der Lipidperoxidation und im Intermediärstoffwechsel entstehen, trägt es zur mitochondrialen Homöostase und zum Schutz vor Carbonylstress bei. Seine Aktivität überschneidet sich mit der Verarbeitung von Ethanol/Acetaldehyd, dem Retinoid-assoziierten Aldehydstoffwechsel und Signalwegen der oxidativen Stressantwort, die Proliferation, Differenzierung und metabolische Anpassung beeinflussen. Eine veränderte ALDH1B1-Expression und ALDH-abhängige Enzymprogramme wurden mit Tumorbiologie und metabolischen Phänotypen in Verbindung gebracht, was eine funktionelle Untersuchung in Modellen für Krebs, Entzündung und mitochondriale Dysfunktion nahelegt.
Aldehyde dehydrogenase 1B1/ALDH1B1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ALDH1B1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ALDH1B1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ALDH1B1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ALDH1B1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.