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Acatin CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-418941 | 20 µg | $397.00 | |||
Acatin HDR 质粒 (m) | sc-418941-HDR | 20 µg | $445.00 |
Slc33a1 编码 acatin(亦称乙酰辅酶 A 转运体 AT-1),它是一种内质网(ER)膜蛋白,负责将乙酰辅酶 A 输入内质网腔内,以支持蛋白质 Nε-赖氨酸乙酰化与糖基化。通过调控内质网蛋白稳态(proteostasis),acatin 会影响分泌通路的成熟、未折叠蛋白反应(UPR)信号传导以及下游细胞应激适应。Slc33a1 功能受扰与内质网稳态失衡及神经退行性表型相关,因此对于研究神经元–胶质细胞的易损性、轴突维持以及应激响应型转录程序具有意义。在小鼠体系中,Slc33a1 功能缺失模型常用于探究乙酰辅酶 A 通量如何影响内质网质量控制、与脂质代谢的串扰,以及不同细胞类型对蛋白毒性应激的特异性敏感性。
Acatin CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Slc33a1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Slc33a1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,Acatin HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Slc33a1靶位点的同源臂包围。
与 Acatin CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Slc33a1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。