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IGF-1 Receptor α/β/IGF1R Double Nickase Plasmid (h) | sc-400084-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
IGF-1 Receptor α/β/IGF1R Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400084-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
IGF1R kodiert den Insulin-like Growth Factor 1 Receptor (IGF‑1R), eine über Disulfidbrücken verbundene α/β‑Rezeptor-Tyrosinkinase, die IGF‑Signale weiterleitet und damit Proliferation, Überleben, Stoffwechsel und Differenzierung reguliert. Die Ligandenbindung fördert die Autophosphorylierung des Rezeptors und rekrutiert die Adapterproteine IRS und SHC, wodurch die Signalwege PI3K–AKT–mTOR sowie RAS–RAF–MEK–ERK aktiviert werden; dies koordiniert den Fortschritt des Zellzyklus und antiapoptotische Antworten. Die Aktivität von IGF1R überschneidet sich mit Integrin-Signalen und der Rückkopplungsregulation der Insulin/IGF‑Signalwege und beeinflusst dadurch zelluläre Stressantworten und anabole Wachstumsprogramme. Eine fehlregulierte IGF1R‑Signalgebung wird mit onkogener Transformation, Mechanismen der Therapieresistenz und einer veränderten Wachstumskontrolle in verschiedenen Krankheitskontexten in Verbindung gebracht, was seine Eignung als zentralen Knotenpunkt in mechanistischen Studien unterstreicht.
IGF-1 Receptor α/β/IGF1R Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des IGF1R-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von IGF1R abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die IGF1R-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit IGF1R-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.