FGF-9CRISPR激活质粒(h): sc-403118-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- FGF-9 CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- FGF-9 CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 FGF-9 CRISPR 激活质粒 (h) 和 FGF-9 CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 FGF9 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：FGF-9: sc-8413，通过WB, IF或者IHC分析
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FGF-9CRISPR激活质粒(h) | sc-403118-ACT | 20 µg | $397.00 |
FGF9 编码成纤维细胞生长因子 9（FGF-9），这是一种分泌型、可与肝素结合的促有丝分裂因子，主要通过 FGFR 介导信号传导，在发育过程与组织稳态中调控细胞增殖、生存以及谱系命运决定。FGF-9 的活性与包括 MAPK/ERK、PI3K/AKT 和 PLCγ 在内的受体酪氨酸激酶级联通路相互整合，进而影响上皮–间充质相互作用、血管生成反应以及细胞外基质重塑。在多种组织背景下，FGF9 表达失调或 FGFR 通路信号异常与发育程序改变及致癌表型相关，因此对于生长因子网络的机制研究具有重要意义。作为更广泛的 FGF–FGFR 轴中的内源性配体，FGF-9 常被用于研究其对调控分化、迁移与增殖的转录程序所产生的影响。
FGF-9 CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性FGF9的表达。
FGF-9 CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的FGF9基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于FGF9转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性FGF-9表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的FGF9位点，并能够研究内源性位点上依赖于FGF-9的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在FGF9表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟FGF-9通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。