Date published: 2026-7-10

1-800-457-3801

SCBT Portrait Logo
Seach Input

TIF1β CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m): sc-423397

0.0(0)
Produkt bewertenBitte stellen Sie eine Frage

Datenblätter
  • Zielspezies: mouse
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • TIF1β Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im TIF1β-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • TIF1β HDR-Plasmid (m) (sc-423397-HDR) wird für die Co-Transfektion mit dem TIF1β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) empfohlen, um die Selektion erfolgreich editierter Zellen durch HDR-vermittelte Integration einer Puromycin-Resistenzkassette und eines RFP-Reportergens zu ermöglichen
  • Das TIF1β HDR-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes eine HDR-Matrize (Homology-Directed Repair) enthält, die den gRNA-Zielstellen im TIF1β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) entspricht
  • Jedes HDR-Plasmid enthält zwei ~800 bp lange Homologiearme, die die Puromycin-Resistenz- und RFP-Kassetten flankieren und so konzipiert sind, dass sie an genomische DNA-Sequenzen binden, die die durch Cas9 induzierte Doppelstrangbruchstelle umgeben, und eine präzise HDR-vermittelte Integration ermöglichen
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: TIF1β: sc-515790
    Gene Editing Promo Banner

    Bestellinformation

    ProduktKatalog #EINHEITPreisANZAHLFavoriten

    TIF1β CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m)

    sc-423397
    20 µg
    $397.00

    TIF1β HDR Plasmid (m)

    sc-423397-HDR
    20 µg
    $445.00

    Übersicht

    TRIM28 (TIF1β/KAP1) ist ein multifunktioneller transkriptioneller Korepressor, der KRAB-Domänen-Zinkfingerproteine mit der epigenetischen Silencing-Maschinerie koppelt. In Mauszellen koordiniert TRIM28 die Heterochromatinbildung durch die Rekrutierung der SETDB1-vermittelten H3K9-Trimethylierung, die Bindung von HP1 sowie Chromatin-Remodeling-Komplexen und reguliert dadurch die Repression transponierbarer Elemente, genomisches Imprinting und linienspezifische Genexpression. Es ist außerdem in Netzwerke der DNA-Schadensantwort und ubiquitinassoziierte Prozesse eingebunden, die die Genomstabilität und transkriptionelle Programme beeinflussen. Eine Fehlregulation der TRIM28-abhängigen Repression wurde in experimentellen Modellen mit veränderter Differenzierung, aberranten Stressantworten und krankheitsassoziierten epigenomischen Zuständen in Verbindung gebracht, die für die Krebsbiologie und neuroentwicklungsbezogene Phänotypen relevant sind.

    TIF1β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Trim28-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid im Pool koexprimiert eine einzigartige sgRNA, die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Trim28-Lokus abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease, und kodiert für GFP, um die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen zu ermöglichen. Diese Multi-Guide-Strategie erhöht die Wahrscheinlichkeit, Frameshifts oder Deletionen zu induzieren, die zu einem funktionellen Knockout führen, und bietet damit eine robustere Alternative zu Single-Guide-Ansätzen. An mehreren Stellen induzierte DSBs werden durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) oder, bei Verwendung mit der enthaltenen HDR-Donor-Matrize, durch homologe Reparatur (HDR) an einer definierten Zielstelle innerhalb des Lokus repariert.

    Bei Verwendung in Verbindung mit dem RFP-exprimierenden HDR-Donor können GFP- und RFP-Fluoreszenz gemeinsam genutzt werden, um transfizierte von editierten Zellpopulationen zu unterscheiden, was die auf Durchflusszytometrie basierenden Sortier- und Klonauswahl-Workflows optimiert.

    Homology-Directed Repair (HDR)-Donor — Puromycin-Kassette mit RFP-Reporter

    Für Anwendungen, die bestätigte, selektierbare Knockout-Klone erfordern, enthält das TIF1β HDR-Plasmid (m) ein HDR-Donorkonstrukt mit einer Puromycin-Resistenzkassette (PuroR) und einem Reporter für rotes fluoreszierendes Protein (RFP), flankiert von Homologiearmen, die für eine definierte Trim28 Zielstelle spezifisch sind.
    Bei Co-Transfektion mit dem TIF1β CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m):

    • Die PuroR-RFP-Kassette integriert sich über HDR an der Cas9-Schnittstelle und unterbricht dabei das Trim28 offene Lesegerüst.
      Die RFP-Fluoreszenz liefert einen unmittelbaren visuellen Hinweis auf eine erfolgreiche Integration und ermöglicht die fluoreszenzbasierte Identifizierung oder Sortierung editierter Zellen vor oder parallel zur Puromycin-Selektion.
      Erfolgreich editierte Zellen werden durch Puromycin-Resistenz bestätigt, was den Aufwand für das Klon-Screening erheblich reduziert.
      Diese Selektionsstrategie eignet sich ideal zur Erzeugung stabiler, klonaler KO-Zelllinien für nachgelagerte Funktionsstudien, Wirkstoffscreenings oder die Modellentwicklung.

    Cre-lox-Kassetten-Entfernungssystem

    Das HDR-Donorkonstrukt verfügt über loxP-Stellen, die die PuroR-RFP-Selektionskassette flankieren, um eine saubere Markerentfernung nach der Klonbestätigung zu ermöglichen. Die transiente Expression der Cre-Rekombinase über das enthaltene Cre-Vektor: sc-418923 schneidet die Kassette heraus, wobei eine minimale Rest-loxP-Stelle innerhalb des Trim28-Lokus verbleibt und potenzielle Störeffekte auf nachgeschaltete Assays eliminiert werden.
    Dieser zweistufige Ansatz:

    • Minimiert Störungen der lokalen Chromatinarchitektur und benachbarter regulatorischer Elemente
      Stellt einen nahezu nativen genomischen Kontext am editierten Locus wieder her
      Ermöglicht die Wiederverwendung der Puromycin-Selektionsstrategie in derselben Zelllinie für weitere Editierungen

    Hauptmerkmale

    • gRNA, die auf Trim28 Exon(e) abzielt, die für die TIF1β Funktion entscheidend sind
      Koexpression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid für eine vereinfachte Verabreichung
      HDR-Donor mit Puromycin-Resistenz für die positive Klonselektion
      loxP-flankierte PuroR-Kassette mit Cre-Rekombinase-Vektor für die nahtlose Markerentfernung
      Wird gebrauchsfertig für die Verabreichung durch Transfektion geliefert

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.