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RACK7 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-411774 | 20 µg | $397.00 |
ZMYND8 (RACK7) kodiert einen Chromatin-„Reader“, der über sein PHD–Bromodomän–PWWP-Modul an acetylierte und methylierte Histone bindet und so die transkriptionelle Regulation koordiniert. RACK7 ist an Programmen des Chromatin-Remodelings und der DNA-Schadensantwort beteiligt und integriert Signale aus Histonmodifikationen, um die Enhancer-Aktivität und die RNA-Polymerase-II-abhängige Transkription zu modulieren. Es wurde mit der Regulation der epithelial-mesenchymalen Transition, hypoxieassoziierten Transkriptionsnetzwerken sowie der Kontrolle der Expression entzündungsrelevanter Gene durch Interaktionen mit Corepressor- und Remodeling-Komplexen in Verbindung gebracht. Eine Fehlregulation ZMYND8-assoziierter Chromatinwege wurde bei Krebs und anderen Erkrankungen beschrieben, die durch eine veränderte Genomstabilität und Transkriptionskontrolle gekennzeichnet sind.
Das RACK7 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des ZMYND8-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des ZMYND8-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von ZMYND8 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die RACK7-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von ZMYND8-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der RACK7-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.