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EAAT4 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-422986 | 20 µg | $397.00 |
Slc1a6 kodiert den exzitatorischen Aminosäuretransporter 4 (EAAT4), einen hochaffinen, Na+-abhängigen Glutamattransporter, der zur Entfernung von extrazellulärem Glutamat beiträgt und exzitotoxische Signalübertragung an Synapsen begrenzt. Im ZNS der Maus ist EAAT4 besonders in zerebellären Purkinje-Neuronen angereichert und formt die synaptische Transmission, indem er die Glutamataufnahme an Ionengradienten koppelt und dadurch neuronale Erregbarkeit und Plastizität beeinflusst. Durch die Regulation der glutamatergen Neurotransmission ist EAAT4 mit Signalwegen verknüpft, die mit synaptischer Homöostase, calciumabhängiger Signalübertragung und neuroinflammatorischen Reaktionen auf fehlreguliertes Glutamat zusammenhängen. Eine veränderte Glutamat-Transportkapazität ist relevant für Modelle zerebellärer Dysfunktion und für weiter gefasste, mit Neurodegeneration assoziierte Phänotypen, bei denen exzitatorische Signalübertragung und synaptische Integrität gestört sind.
Das EAAT4 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Slc1a6-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Slc1a6-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Slc1a6 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die EAAT4-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Slc1a6-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der EAAT4-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.