Date published: 2026-7-18

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CYTIP CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m): sc-432749

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Datenblätter
  • Zielspezies: mouse
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • CYTIP Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im CYTIP-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: CYTIP: sc-390857
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    CYTIP CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m)

    sc-432749
    20 µg
    $397.00

    Übersicht

    Cytip (cytohesin-1-interagierendes Protein) kodiert CYTIP, ein Adapterprotein, das die Cytohesin/ARF‑GTPase-Signalübertragung reguliert und dazu beiträgt, integrinabhängige Adhäsion und Umbauprozesse des Zytoskeletts zu koordinieren. In Immunzellen trägt CYTIP zur Inside-out-Signalübertragung bei, die LFA‑1/ICAM-Interaktionen feinabstimmt, und beeinflusst damit die Motilität von Leukozyten, die Stabilität der immunologischen Synapse sowie die Dynamik von Zell‑Zell-Kontakten. Über diese Funktionen ist Cytip mit Signalwegen verknüpft, die Lymphozytenaktivierung, Migration und Gewebeinfiltration steuern, und ist damit relevant für mechanistische Studien zur Immunregulation und zu inflammationsassoziierten Phänotypen. Eine Störung von Cytip in der Maus ist daher nützlich, um zu untersuchen, wie Adhäsionssignalgebung in vivo und in kultivierten Immunmodellen mit nachgeschalteten Polarisations- und Trafficking-Programmen zusammenspielt.

    Das CYTIP CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Cytip-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Cytip-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.

    Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Cytip nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die CYTIP-Proteinexpression aufheben.

    Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Cytip-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der CYTIP-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.

    Hauptmerkmale

    • sgRNAs, die auf Cytip-Exone abzielen, die für die CYTIP-Funktion entscheidend sind
      Ko-Expression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid zur vereinfachten Verabreichung
      GFP-Reporter zur Identifizierung transfizierter Zellen
      Pool von Plasmiden, die auf mehrere Cytip-Genomstellen abzielen, um die Knockout-Effizienz zu verbessern
      Kompatibel mit der Verabreichung durch Transfektion

    Designvarianten

    CRISPRs +/- HDRs

    • gRNAs, die vom CYTIP CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) und vom CYTIP CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m2) kodiert werden, zielen auf unterschiedliche Stellen innerhalb des Cytip-Lokus ab. Es kann ein oder beide Targeting-Designs verfügbar sein. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.
      HDR-Donorkonstrukte, kodiert durch das CYTIP HDR-Plasmid (m) und CYTIP HDR-Plasmid (m2) kodiert, enthalten eine Puromycin-Resistenzkassette und einen RFP-Reporter, flankiert von Cytip-Homologiearmen, um die homologe Reparatur an definierten Cytip-Zielstellen entsprechend den CRISPR/Cas9-KO-Designs zu unterstützen. Die Verfügbarkeit von HDR-Donoren kann variieren. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.