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AGA CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-419038 | 20 µg | $397.00 | |||
AGA HDR 质粒 (m) | sc-419038-HDR | 20 µg | $445.00 |
Aga 编码溶酶体天冬酰基葡萄糖胺苷酶(AGA),这是一种水解酶,通过切割天冬酰基葡萄糖胺连接键,催化 N-连接型糖蛋白的逐步降解。该活性有助于维持溶酶体蛋白质稳态,并促进由糖蛋白产生的寡糖周转,与自噬–溶酶体功能以及内体/溶酶体运输过程相交。AGA 功能受损会削弱溶酶体分解代谢,导致未降解的糖氨基酸累积;这一细胞表型常用于研究溶酶体功能障碍和糖蛋白质量控制通路。AGA 在机制上与溶酶体贮积相关生物学密切关联,并为探究溶酶体损伤如何影响神经元与免疫细胞稳态提供了模型。
AGA CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Aga基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Aga基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,AGA HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Aga靶位点的同源臂包围。
与 AGA CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Aga 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。