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ADHγ CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-402261 | 20 µg | $397.00 |
ADH1C kodiert die menschliche Gamma‑Untereinheit der Alkoholdehydrogenase (ADHγ), eine zinkabhängige, zytosolische Oxidoreduktase, die die NAD⁺‑abhängige Oxidation von Ethanol sowie anderen kurzkettigen Alkoholen und Aldehyden katalysiert. Diese enzymatische Aktivität unterstützt den Alkohol- und Retinoidstoffwechsel und steht mit der zellulären Redoxhomöostase in Verbindung, indem sie das NADH/NAD⁺‑Gleichgewicht und nachgeschaltete Wege des Aldehydabbaus beeinflusst. Variationen oder Fehlregulationen des mit ADH1C verknüpften Stoffwechselumsatzes können die Acetaldehydbelastung und Reaktionen auf oxidativen Stress modulieren – Prozesse, die mit Leberschädigung, der Metabolisierung von Karzinogenen und breiteren metabolischen Phänotypen in Zusammenhang gebracht werden. Als Teil des ADH‑Genclusters ist ADHγ außerdem relevant für Studien zur gewebespezifischen Entgiftung und Xenobiotika‑Verarbeitung in der Biologie der Leber sowie des oberen Aero‑Digestivtrakts.
Das ADHγ CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des ADH1C-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des ADH1C-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von ADH1C nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die ADHγ-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von ADH1C-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der ADHγ-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.