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SR-2A Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-401532-ACT | 20 µg | $397.00 |
HTR2A codifica il recettore umano della serotonina 5-HT2A (SR-2A), un recettore accoppiato a proteine G che si associa principalmente a Gq/11 per stimolare la segnalazione della fosfolipasi C, la produzione di fosfati dell’inositolo, la mobilizzazione intracellulare di Ca2+ e le cascate a valle dipendenti da PKC. L’attività di SR-2A si interseca con i programmi trascrizionali MAPK/ERK e con altri programmi dipendenti dall’attività, che modellano l’eccitabilità neuronale, la plasticità sinaptica e la funzione dei circuiti corticali. Nel sistema nervoso centrale, l’espressione di HTR2A e le dinamiche della sua segnalazione sono spesso studiate in relazione all’integrazione dei neurotrasmettitori e al cross-talk tra recettori che influenzano stati di rete rilevanti per il comportamento. Una segnalazione serotoninergica alterata che coinvolge SR-2A è stata associata in letteratura alla biologia delle malattie neuropsichiatriche, inclusi schizofrenia, disturbi dell’umore e vie legate all’emicrania, supportandone l’uso come bersaglio meccanicistico in modelli di neuroscienze cellulari e dei sistemi.
SR-2A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di HTR2A senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
SR-2A Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus HTR2A nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione HTR2A, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di SR-2A. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus HTR2A nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da SR-2A nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via SR-2A nelle cellule tumorali con espressione di HTR2A silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.