SLC41A1 Plasmide di attivazione CRISPR (h): sc-406258-ACT

SLC41A1 codifica un trasportatore di magnesio della membrana plasmatica che contribuisce all’efflusso cellulare di Mg2+ e all’omeostasi complessiva del magnesio, un determinante chiave dell’attività enzimatica, del metabolismo dipendente dall’ATP e della regolazione dei canali ionici. Modulando la disponibilità intracellulare di Mg2+, SLC41A1 influenza processi di segnalazione associati a proteine leganti nucleotidi e a reti di fosforilazione, e può incidere sulla funzione mitocondriale e sulle risposte cellulari allo stress. Un’alterata regolazione del trasporto del magnesio è stata associata a una disregolazione dell’eccitabilità neuronale e a fenotipi metabolici, rendendo SLC41A1 un nodo utile per lo studio dell’omeostasi ionica in contesti rilevanti per la malattia. La sua espressione e attività vengono quindi frequentemente esaminate in modelli di neurobiologia, bioenergetica e fisiologia del trasporto.

SLC41A1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di SLC41A1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.

SLC41A1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus SLC41A1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.

Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione SLC41A1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di SLC41A1. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus SLC41A1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da SLC41A1 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via SLC41A1 nelle cellule tumorali con espressione di SLC41A1 silenziata o ridotta.

Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.