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CYP27B1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401155-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CYP27B1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401155-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CYP27B1 kodiert die mitochondriale 25‑Hydroxyvitamin‑D‑1α‑Hydroxylase, das Schlüsselenzym, das 25‑Hydroxyvitamin D in das aktive Hormon 1,25‑Dihydroxyvitamin D (Calcitriol) umwandelt. Durch die Kontrolle der Calcitriolmenge reguliert CYP27B1 Signalprogramme des Vitamin‑D‑Rezeptors (VDR), die die Calcium‑ und Phosphathomöostase, die Knochenmineralisierung sowie weitreichende transkriptionelle Netzwerke in Immun‑ und Epithelzellen beeinflussen. Seine Aktivität verknüpft den Sterolstoffwechsel mit endokriner Signalgebung und mitochondrialen Redoxprozessen, mit nachgelagerten Effekten auf Differenzierung, Entzündungsstatus und Barrierebiologie. Eine dysregulierte CYP27B1‑Expression oder ‑Funktion ist mit Störungen des Vitamin‑D‑Stoffwechsels assoziiert und wurde in Zusammenhängen wie Skelettphänotypen, Autoimmunanfälligkeit, chronischer Entzündung und veränderter Signalgebung im Tumormikromilieu untersucht.
CYP27B1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CYP27B1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CYP27B1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CYP27B1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CYP27B1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.