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c-Mpl CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403035-ACT | 20 µg | $397.00 |
MPL kodiert den Thrombopoetinrezeptor c‑Mpl, einen Zytokinrezeptor der Klasse I, der die Erhaltung hämatopoetischer Stamm- und Vorläuferzellen reguliert und die Proliferation von Megakaryozyten sowie die Thrombozytenproduktion antreibt. Nach Bindung von Thrombopoetin signalisiert c‑Mpl über die JAK2/STAT5-, MAPK/ERK- und PI3K/AKT‑Signalwege, um Überleben, Differenzierung und zytokinresponsive Transkriptionsprogramme zu koordinieren. Eine fehlregulierte MPL‑Signalgebung oder -Expression ist mit aberranter Hämatopoese verbunden und wird häufig im Kontext myeloproliferativer Neoplasien sowie erblicher Thrombozytopenie‑Syndrome untersucht. Als Oberflächenrezeptor mit gut definierten nachgeschalteten Readouts stellt c‑Mpl einen gut zugänglichen Ansatzpunkt dar, um Zytokinsignalgebung, Linienfestlegung und Stresshämatopoese in humanen Zellmodellen zu untersuchen.
c-Mpl Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen MPL-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
c-Mpl Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des MPL-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der MPL-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen c-Mpl-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native MPL-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von c-Mpl-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des c-Mpl-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem MPL-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.