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PMCA1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-402691-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
PMCA1 CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-402691-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
ATP2B1 kodiert die humane Plasmamembran‑Ca2+-ATPase 1 (PMCA1), eine hochaffine Ca2+-Effluxpumpe, die nach Signalereignissen die niedrige zytosolische Calciumkonzentration wiederherstellt. Durch den Export von Ca2+ in den Extrazellulärraum beeinflusst PMCA1 Amplitude und Dauer Ca2+-abhängiger Signalwege, die Membranerregbarkeit, Sekretion, Zytoskelettdynamik und Transkriptionsprogramme regulieren. Die PMCA1‑Aktivität ist in eine calmodulinabhängige Regulation sowie nachgeschaltete Effektorwege wie CaMK und Calcineurin/NFAT eingebunden und trägt so zur Aufrechterhaltung der zellulären Ca2+-Homöostase bei. Eine gestörte Calciumregulation unter Beteiligung von ATP2B1 wurde in genetischen und funktionellen Studien mit kardiovaskulären und neurobiologischen Phänotypen in Verbindung gebracht, was seine Relevanz für mechanistische Forschung zu calciumgetriebenen Krankheitsprozessen unterstreicht.
PMCA1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ATP2B1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PMCA1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ATP2B1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ATP2B1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PMCA1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ATP2B1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PMCA1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PMCA1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ATP2B1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.