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OAS3 Double Nickase Plasmid (m) | sc-434225-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das murine Oas3-Gen kodiert die 2′-5′-Oligoadenylat-Synthetase 3 (OAS3), einen durch Interferon induzierbaren zytosolischen Sensor für virale doppelsträngige RNA, der die Bildung von 2-5A katalysiert, um RNase L zu aktivieren und den Abbau viraler und zellulärer RNA zu fördern. Diese OAS3–RNase-L-Achse ist mit der Typ-I-Interferon-Signalübertragung, der angeborenen immunologischen Restriktion und der stressassoziierten Kontrolle der Translation verknüpft und prägt so antivirale Antworten und entzündliche Effektorprogramme. Eine veränderte Regulation der Aktivität der OAS-Familie wurde mit fehlgesteuerten Interferonprogrammen und immunvermittelter Pathologie in Zusammenhang gebracht, wodurch OAS3 einen nützlichen Ansatzpunkt darstellt, um Wirt–Pathogen-Interaktionen und die Dynamik der Signalwege der angeborenen Immunität in Mausmodellen zu untersuchen.
OAS3 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Oas3-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Oas3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Oas3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Oas3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.