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TTP CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-423781 | 20 µg | $397.00 | |||
TTP HDR 质粒 (m) | sc-423781-HDR | 20 µg | $445.00 |
Zfp36 编码 tristetraprolin(TTP),这是一种结合 AU 富集元件(ARE)的 RNA 结合蛋白,可促进去腺苷化并加速不稳定 mRNA 的降解;这些 mRNA 编码的炎症介质包括 TNF、IL6 和 CSF2。TTP 通过与 CCR4–NOT 去腺苷化酶复合体协同作用,并与 NF-κB 以及受 p38 MAPK/MK2 调控的应激反应通路发生交叉,作为先天免疫信号的重要转录后“刹车”。在小鼠细胞中,Zfp36 的活性会影响巨噬细胞活化、细胞因子反馈调控和免疫稳态;其失调与慢性炎症表型相关,并会改变感染和自身免疫模型中的应答。由于 TTP 能广泛调节炎症相关转录本的周转,Zfp36 常被用于研究 mRNA 稳定性调控、应激颗粒动态以及刺激依赖性的基因表达程序等通路。
TTP CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Zfp36基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Zfp36基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TTP HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Zfp36靶位点的同源臂包围。
与 TTP CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Zfp36 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。