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claudin-5 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400734-ACT | 20 µg | $397.00 |
CLDN5 kodiert Claudin-5, ein tetraspanes Tight-Junction-Protein, das in Endothelzellen stark angereichert ist. Dort trägt es zur Selektivität der parazellulären Barriere bei und erhält die Gefäßintegrität aufrecht. Claudin-5 ist eine zentrale strukturelle Komponente der Tight-Junction-Stränge und wirkt mit junctionalen Gerüstproteinen sowie Regulatoren des Zytoskeletts zusammen, um Zell-Zell-Adhäsion, Polarität und eine kontrollierte Permeabilität in mikrovaskulären Gefäßbetten zu koordinieren. Eine veränderte CLDN5-Expression oder junctionale Organisation wird mit Störungen der Blut-Hirn-Schranke und Phänotypen vaskulärer Leckage in Verbindung gebracht, die an Neuroinflammation, Reaktionen auf ischämische Verletzungen und tumorassoziierter Angiogenese beteiligt sind. Daher wird CLDN5 häufig in Modellen zur endothelialen Differenzierung, Barriere-Signalgebung und vaskulären Homöostase untersucht.
claudin-5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CLDN5-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
claudin-5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CLDN5-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CLDN5-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen claudin-5-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CLDN5-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von claudin-5-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des claudin-5-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CLDN5-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.