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WSB1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-411879-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
WSB1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-411879-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
WSB1 (WD-repeat and SOCS-box containing 1) kodiert eine Substraterkennungskomponente von Cullin-RING-E3-Ubiquitin-Ligase-Komplexen und verknüpft dadurch spezifische Proteinziele mit Ubiquitinierung und proteasomalem Abbau. Über seine WD-Repeat-Domäne und die SOCS-Box trägt WSB1 zur Koordination der Proteinkontrolle (Protein-Quality-Control) und zur signalabhängigen Umgestaltung zellulärer Proteome bei, mit nachgelagerten Effekten auf Stressantworten, Wachstumsfaktorsignale und Transkriptionsprogramme. Eine veränderte WSB1-Aktivität wurde in Zusammenhängen untersucht, in denen ubiquitinvermittelte Regulation zu krankheitsassoziierten Phänotypen beiträgt, darunter Tumorbiologie sowie eine fehlregulierte zelluläre Anpassung an Hypoxie und Stress. Als Knotenpunkt in der Schaltkreisebene des Ubiquitinwegs wird WSB1 häufig hinsichtlich seines Einflusses auf Pathway-Dynamik und proteostaseabhängige Regulation untersucht.
WSB1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des WSB1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von WSB1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die WSB1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit WSB1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.