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Waf1/Cip1/CDKN1A p21 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400013-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400013-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CDKN1A kodiert p21 (Waf1/Cip1), einen cyclinabhängigen Kinaseinhibitor, der Stresssignale integriert, um das Fortschreiten des Zellzyklus am G1/S-Kontrollpunkt zu bremsen. p21 wird als Reaktion auf DNA-Schäden insbesondere durch p53 stark induziert, hemmt CDK2- und CDK1-assoziierte Komplexe und moduliert die PCNA-abhängige DNA-Replikation und -Reparatur. Über diese Wechselwirkungen beeinflusst p21 Seneszenz, einen vorübergehenden Zellzyklusarrest sowie Zellschicksalsentscheidungen unter genotoxischem Stress. Eine fehlregulierte CDKN1A/p21-Signalgebung wird häufig mit onkogener Transformation und der Störung von Tumorsuppressor-Signalwegen in Verbindung gebracht und ist zudem relevant für Prozesse wie die Toleranz gegenüber Replikationsstress und Modelle therapieinduzierter Seneszenz.
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CDKN1A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CDKN1A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CDKN1A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CDKN1A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.