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V-ATPase A1 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-400975 | 20 µg | $397.00 |
ATP6V0A1 kodiert die a1-Isoform der V0-„a“-Untereinheit der vakuolären H\+-ATPase (V-ATPase), einer aus mehreren Untereinheiten bestehenden Protonenpumpe, die Endosomen, Lysosomen und sekretorische Vesikel ansäuert. Durch die Etablierung luminaler pH-Gradienten unterstützt die V-ATPase A1 die rezeptorvermittelte Endozytose, die lysosomale Proteolyse, den Autophagie-Lysosomen-Flux sowie den vesikulären Transport und trägt zur Ionenhomöostase und zur Reifung von Organellen bei. Störungen der V-ATPase-abhängigen Ansäuerung werden mit Defekten im Proteinumsatz und im Membrantransport in Verbindung gebracht, mit nachgeschalteten Auswirkungen auf zelluläre Stressantworten sowie neurodegenerative und krebsassoziierte Phänotypen. Als zentraler Regulator der Organellenansäuerung wird V-ATPase A1 häufig in Signalwegen untersucht, die die Nährstoffsensorik, die mTORC1-Signalgebung an Lysosomen und die endolysosomale Dynamik steuern.
Das V-ATPase A1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des ATP6V0A1-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des ATP6V0A1-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von ATP6V0A1 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die V-ATPase A1-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von ATP6V0A1-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der V-ATPase A1-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.