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UPase CRISPR/Cas9 KO Plasmid (m) | sc-423623 | 20 µg | $397.00 |
Das murine Upp1 kodiert die Uridinphosphorylase (UPase), ein Schlüsselenzym des Pyrimidin-Salvage-Wegs, das die reversible Phosphorolyse von Uridin zu Uracil und Ribose-1-phosphat katalysiert. Durch die Regulation zellulärer Nukleosid-Pools beeinflusst UPase die Verfügbarkeit von RNA-/DNA-Vorstufen und ist in Programme des Nukleotidstoffwechsels eingebunden, die Proliferation und metabolische Anpassung unterstützen. Die Expression von Upp1 und die UPase-Aktivität wurden in Zusammenhängen von Gewebeumbau und Stressantworten untersucht, in denen Verschiebungen im Nukleosidumsatz die zelluläre Homöostase verändern können. Als metabolischer Knotenpunkt wird Upp1 häufig genutzt, um Zusammenhänge zwischen dem Pyrimidinstoffwechsel, dem mitochondrialen und Redox-Gleichgewicht sowie dem Crosstalk von Signalwegen zu untersuchen, die Wachstums- und Überlebensphänotypen beeinflussen.
Das UPase CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (m) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des Upp1-Gens in mouse-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des Upp1-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von Upp1 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die UPase-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von Upp1-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der UPase-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.