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Superoxide Dismutase 1/SOD1 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423069-NIC | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Sod1** kodiert die Superoxiddismutase 1 (SOD1), ein zytosolisches, Cu/Zn-abhängiges antioxidatives Enzym, das die Dismutation von Superoxidradikalen zu Wasserstoffperoxid und Sauerstoff katalysiert und dadurch oxidative Schäden an Proteinen, Lipiden und Nukleinsäuren begrenzt. Die SOD1-Aktivität ist in zelluläre Signal- und Regulationswege der Redoxhomöostase eingebunden, darunter das Glutathionsystem sowie Katalase-/Peroxiredoxin-Systeme, und beeinflusst unter oxidativem Stress die Mitochondrienfunktion, die Proteostase und inflammatorische Signalgebung. Eine fehlregulierte SOD1-Funktion oder Aggregation wurde umfassend im Kontext von Neurodegeneration und der Vulnerabilität von Motoneuronen untersucht; zudem wird eine veränderte **Sod1**-Expression zur Modellierung oxidativer Schädigung bei Alterung, metabolischem Stress und Toxikantexposition eingesetzt. Daher ist **Sod1** ein häufiges Ziel für mechanistische Studien zur Handhabung reaktiver Sauerstoffspezies (ROS), zur Stressantwort-Signalgebung und zu nachgeschalteten, schädigungsassoziierten Signalwegen.
Superoxide Dismutase 1/SOD1 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Sod1-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Sod1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Sod1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Sod1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.