Date published: 2026-7-10

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SUMF1 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h): sc-406543

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Datenblätter
  • Zielspezies: human
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • SUMF1 Das CRISPR/Cas9-Knockout (KO)-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, von denen jedes für die Cas9-Nuklease und eine zielspezifische 20-nt-Guide-RNA (gRNA) kodiert, die für maximale Knockout-Effizienz unter Verwendung von Sequenzen aus der GeCKO v2-Bibliothek entwickelt wurde
  • gRNA-Sequenzen lenken Cas9 so, dass es ortsspezifische Doppelstrangbrüche (DSBs) im SUMF1-Genomlokus induziert, was zu einem Gen-Knockout durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ) führt
  • Die Puromycin-Resistenz- und RFP-Gene werden von LoxP-Stellen flankiert, was die Entfernung der Selektionsmarker mittels Cre-Rekombinase (Cre-Vektor: sc-418923) nach der Etablierung stabiler Knockout-Zelllinien ermöglicht
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: SUMF1: sc-376035
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    SUMF1 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h)

    sc-406543
    20 µg
    $397.00

    Übersicht

    SUMF1 kodiert das Formylglycin-generierende Enzym (FGE), eine Oxidase im Lumen des endoplasmatischen Retikulums, die für die posttranslationale Aktivierung aller Sulfatasen erforderlich ist, indem sie ein konserviertes Cystein in Cα‑Formylglycin umwandelt. Diese Modifikation ist essenziell für die Hydrolyse von Sulfatestern in Lysosomen und im Extrazellulärraum und verknüpft SUMF1 mit dem Umsatz von Glykosaminoglykanen, dem Sphingolipidstoffwechsel sowie allgemeineren lysosomenabhängigen katabolen Signalwegen. Eine Störung von SUMF1 vermindert die Sulfataseaktivität insgesamt und kann zu lysosomalen Speicherphänotypen führen, die durch eine beeinträchtigte Substratbeseitigung und eine veränderte zelluläre Homöostase gekennzeichnet sind. SUMF1 wird daher häufig im Kontext der Sulfatase-Biologie, der Lysosomenfunktion und der Mechanismen untersucht, die der Pathogenese im Zusammenhang mit dem multiplen Sulfatase-Defekt zugrunde liegen.

    Das SUMF1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des SUMF1-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des SUMF1-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.

    Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von SUMF1 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die SUMF1-Proteinexpression aufheben.

    Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von SUMF1-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der SUMF1-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.

    Hauptmerkmale

    • sgRNAs, die auf SUMF1-Exone abzielen, die für die SUMF1-Funktion entscheidend sind
      Ko-Expression von SpCas9 und sgRNA aus einem einzigen Plasmid zur vereinfachten Verabreichung
      GFP-Reporter zur Identifizierung transfizierter Zellen
      Pool von Plasmiden, die auf mehrere SUMF1-Genomstellen abzielen, um die Knockout-Effizienz zu verbessern
      Kompatibel mit der Verabreichung durch Transfektion

    Designvarianten

    CRISPRs +/- HDRs

    • gRNAs, die vom SUMF1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) und vom SUMF1 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h2) kodiert werden, zielen auf unterschiedliche Stellen innerhalb des SUMF1-Lokus ab. Es kann ein oder beide Targeting-Designs verfügbar sein. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.
      HDR-Donorkonstrukte, kodiert durch das SUMF1 HDR-Plasmid (h) und SUMF1 HDR-Plasmid (h2) kodiert, enthalten eine Puromycin-Resistenzkassette und einen RFP-Reporter, flankiert von SUMF1-Homologiearmen, um die homologe Reparatur an definierten SUMF1-Zielstellen entsprechend den CRISPR/Cas9-KO-Designs zu unterstützen. Die Verfügbarkeit von HDR-Donoren kann variieren. Siehe „Verwandte Produkte“ für Verfügbarkeit.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.