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PSGL-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401534-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
PSGL-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401534-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SELPLG kodiert den P‑Selectin‑Glykoprotein‑Liganden 1 (PSGL‑1), ein mucinartiges, sialyliertes und fukosyliertes Zelloberflächen‑Glykoprotein, das auf den meisten Leukozyten exprimiert wird und durch Bindung an P‑, E‑ und L‑Selectine das Anheften (Tethering) und Rollen auf aktiviertem Endothel vermittelt. Über seine Rolle bei der selectinabhängigen Adhäsion koordiniert PSGL‑1 frühe Schritte der Leukozytenrekrutierung, der Transmigration und des inflammatorischen Zelltraffickings und integriert dabei Chemokin‑Signalgebung und Integrinaktivierung, um Leukozyten‑Endothel‑Interaktionen zu stabilisieren. PSGL‑1 ist außerdem an der Kommunikation zwischen Leukozyten und Thrombozyten beteiligt und kann nachgeschaltete Programme der Immunaktivierung beeinflussen, indem es kontaktabhängige Signalwege moduliert. Eine Fehlregulation der PSGL‑1‑Selectin‑Biologie wird mit chronisch‑entzündlichen Erkrankungen, vaskulärer Entzündung, thromboseassoziierter Leukozytenrekrutierung sowie in Forschungskontexten zur krebsassoziierten Metastasierung in Verbindung gebracht, wodurch SELPLG ein nützliches Ziel für mechanistische Studien zu Adhäsion und Immunregulation darstellt.
PSGL-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SELPLG-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SELPLG abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SELPLG-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SELPLG-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.