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Parkin Double Nickase Plasmid (m) | sc-424514-NIC | 20 µg | $410.00 |
Mouse Park2 kodiert die E3-Ubiquitin-Ligase Parkin, einen zentralen Regulator der mitochondrialen Qualitätskontrolle, der mit PINK1 zusammenarbeitet, um geschädigte Mitochondrien für eine ubiquitinabhängige Mitophagie zu markieren. Die von Parkin vermittelte Ubiquitinierung von Proteinen der äußeren Mitochondrienmembran steuert den proteasomalen Abbau, die mitochondriale Dynamik sowie stressresponsive Signalwege, die die bioenergetische Homöostase beeinflussen. Aufgrund dieser Funktionen wird Park2 широко zur Untersuchung von Signalwegen eingesetzt, die oxidativen Stress, mitochondriale Dysfunktion und Proteostase in neuronalen und nicht-neuronalen Systemen verknüpfen. Eine Fehlregulation der Parkin-Aktivität ist stark mit Mechanismen assoziiert, die für Neurodegeneration relevant sind, insbesondere mit Prozessen, die an Parkinson-ähnlichen Phänotypen beteiligt sind.
Parkin Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Park2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Park2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Park2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Park2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.