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Parkin CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400226-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen PARK2 kodiert Parkin, eine E3-Ubiquitin-Ligase vom RBR-Typ, die geschädigte Proteine und Organellen für den Abbau über das Ubiquitin-Proteasom-System sowie über autophagievermittelte Mechanismen markiert. Parkin ist ein zentraler Effektor der PINK1–Parkin-Mitophagie und reguliert die mitochondriale Qualitätskontrolle, Reaktionen auf oxidativen Stress und die Energiehomöostase durch koordinierte Ubiquitinierung von Substraten der äußeren Mitochondrienmembran. Durch die Modulation von Proteinumsatz und Organellendynamik beeinflusst Parkin die Aufrechterhaltung neuronaler Funktionen und umfassendere Programme der zellulären Stressanpassung. Eine Dysregulation der PARK2-assoziierten Ubiquitinierung und Mitophagie wurde mit Neurodegeneration und veränderter mitochondrialer Signalübertragung in Verbindung gebracht, was seinen häufigen Einsatz in mechanistischen Studien zur mitochondrialen Dysfunktion unterstützt.
Parkin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PARK2-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Parkin Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PARK2-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PARK2-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Parkin-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PARK2-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Parkin-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Parkin-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PARK2-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.