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NOXA Double Nickase Plasmid (h) | sc-400498-NIC | 20 µg | $410.00 |
PMAIP1 kodiert das BH3-only-Protein NOXA, einen p53-responsiven, proapoptotischen Regulator, der die Permeabilisierung der äußeren Mitochondrienmembran fördert, indem er antiapoptotische Mitglieder der BCL2-Familie neutralisiert – mit ausgeprägter Selektivität für MCL1 und BCL2A1. NOXA integriert Signale von DNA-Schäden und onkogenem Stress, um den intrinsischen Apoptoseweg zu aktivieren, und beeinflusst dadurch die Caspase-Aktivierung, die zelluläre Fitness und stressinduzierte Entscheidungen über das Zellschicksal. Seine Expression und sein Abbau werden zudem durch ubiquitinvermittelte Proteostase sowie durch Transkriptionsprogramme geprägt, die downstream von p53 und verwandten Stresssignalwegen liegen. Eine Dysregulation der PMAIP1–NOXA-Achse wird häufig im Zusammenhang mit veränderter Apoptoseempfindlichkeit untersucht, unter anderem in der Krebsbiologie und bei Mechanismen der Resistenz gegen mitochondriale Apoptose.
NOXA Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des PMAIP1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von PMAIP1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die PMAIP1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit PMAIP1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.